Разное

Microsporum canis что это: Микроспория — КВД №2

Содержание

Microsporum canis | Официальный сайт Johnson & Johnson

Это возбудитель микроспории (контагиозного грибкового заболевания, протекающего с поражением кожи и ее придатков). Микроспория относится к наиболее часто встречающимся заболеваниям микотической этиологии в педиатрической практике. В настоящее время методами молекулярной биологии описано 12 представителей рода Microsporum: M. ferrugineum, M. audouinii, M. nanum, M.racemosum, M. gallinae, M.fulvum, M. cookei, M. gypseum, M. amazonicum, M. canis, M. persicolor, M. praecox. Для клиницистов наибольшее значение имеют следующие 4 вида грибов: M. canis, M. audouinii, M. gypseum и M. ferrugineum. Факторами патогенности грибов рода Microsporum являются кератинолитические ферменты Дерматомицеты разделяют на 3 группы в зависимости от преимущественного ареола обитания: геофильные грибы — обитающие в почве и редко выступающие причиной дерматомикозов; зоофильные в основном являющиеся патогенными для животных, но способные поражать и людей; антропофильные — вызывающие заболевание у людей и очень редко — у животных. Таким образом, деление носит не строгий характер. Распространение преимущественно зоофильных или антропофильных возбудителей определяет эпидемиологические особенности развития инфекционного процесса. Так, для зооантропонозной микроспории не свойственно хроническое течение в отличие от микроспории, обусловленной антропофильными грибами. Самым распространенным возбудителем микроспории в России является зоофильный гриб Microsporum canis, вторым по частоте встречаемости — антропофильный гриб Microsporum ferrugineum. Существенно реже заболевание вызывает геофильный гриб Microsporum gypseum.

При поражении гладкой кожи появляется гиперемированное, несколько отечное, шелушащееся пятно, где могут располагаться мелкие везикулы, микрокорочки. По периферии очага поражения кожи, как правило, имеется гиперемированный валик, состоящий из папулезных элементов, отграничивающий очаг, принимающий кольцевидную форму. Внутри кольца иногда возникает новый очаг, что приводит к образованию «кольца в кольце».

При поражении волосистой части головы клиническая картина может различаться в зависимости от этиологического агента, вызываемого заболевание. В случае, если возбудителем является зоофильный гриб, количество очагов поражения, как правило, невелико (1-2), очаги крупные, обычно округлой формы, четко очерчены, волосы в очагах обломаны приблизительно на одной высоте (5-8 мм), имеется обильное муковидное шелушение. При поражении грибами антропофилами развивается несколько мелких округлых очажков поредения волос с обильным шелушением.

< Назад к списку терминов

Микроспория

Дерматофиты (в простонародье – лишай) – одна из разновидностей грибов, которые вызывают поражения поверхностных слоев кожи, волос, когтей.

Существует три вида дерматофитов, которые вызывают кожные заболевания у мелких животных: Microsporum canis, Microsporum gypseum и Trichophyton mentagrophytes.

Microsporum canis – самая частая причина дерматофитии у кошек и собак. Этот дерматофит живет на кошке или собаке, но может находиться в окружающей среде до 18 месяцев! Кроме того, некоторые животные могут быть носителями спор и не проявлять никаких кожных поражений.

Microsporum gypseum обитает в почве,

Trichophyton mentagrophytes чаще переносят грызуны.

Частота встречаемости дерматофитии зависят от климата и наличия источника заражения. В жарком, влажном климате наблюдается более высокая частота случаев.
К группе риска относятся животные, живущие в тесном контакте друг с другом (питомники или приюты), копающиеся в земле или охотящиеся на грызунов. Есть породы кошек и собак имеющие генетическую предрасположенность к заболеваниям, вызванным M. canis: йоркширский терьер, гималайские и персидские кошки.

Дерматофиты опасны и для людей, поскольку могут передаваться, особенно людям со сниженным иммунитетом, пожилым людям и детям.

Клинические признаки

В каждом случае клинические признаки дерматофитии могут иметь значительные отличия. Очень редко наблюдаются классические «лишайные» округлые области без волос с шелушением по краю.

Первыми клиническим признаком часто является просто безволосый участок кожи. Не всегда присутствуют воспалительные или другие явных изменения кожи. Иногда бывают тяжелые поражения кожи, включая пятнистые безволосые участки с корочками, чешуйками и сыпью, которые могут охватывать все тело. Чаще поражения наблюдаются на голове и ногах. У собак обычно наблюдаются локализованные узелковые поражения, называемые «керион».

Диагноз

Вид дерматофитии можно определить только методом посева!

Поскольку заболевание может проявляться многообразно, диагноз не может быть поставлен на основании только внешнего осмотра.

Существует три основных метода диагностики. Для подтверждения диагноза необходимо несколько положительных результатов.

  1. Недорогой, но лишь отчасти достоверный тест – использование лампы Вуда. Только приблизительно 50% случаев, вызванных M. canis, может давать свечение стержня волоса характерным яблочно-зеленым светом. Несмотря на результат исследования лампой Вуда, необходимо выполнить посев для уточнения диагноза или найти споры грибов в пораженном волосе под микроскопом.
  2. В некоторых случаях споры дерматофитов могут быть обнаружены при микроскопическом исследовании пораженных волос или в цитологии с поверхности кожи. Если споры обнаружены (40-70% случаев), то этого достаточно для постановки диагноза.
  3. Наиболее точным методом диагностики является посев на среды с последующей микроскопией выросшей культуры для постановки окончательного диагноза.

Иногда для постановки диагноза требуется гистологическое исследование кожи.

Лечение

Лечение зависит от тяжести заболевания, от возраста животного, его общего состояния здоровья и от условий среды его обитания. У молодых здоровых животных заболевание может самостоятельно пройти. Но во многих случаях бывает необходима достаточно агрессивная терапия.

Терапии подлежит не только больное животное, но и все животные, находящиеся в контакте, а также среда, где они обитают. Если есть вероятность, что в доме находится животное — носитель спор, то для его выявления при помощи посева должны быть проверены  все питомцы.

Животные с отрицательным посевом должны быть по возможности изолированы от пораженных.
Если в доме большое количество животных, то рекомендуется всем проводить местные обработки всего тела (обычно при помощи лечебного шампуня или специального раствора).

Собаки и кошки с длинной шерстью могут быть пострижены для облегчения местных обработок и для снижения возможности распространения ими спор в окружающей среде. Животные, у которых есть поражения на коже, должны получать системное лечение препаратами внутрь.

Обработка среды крайне важна. Твердые поверхности должны быть продезинфицированы горячим хозяйственным раствором извести 1/10 или раствором хлоргексидина 4%. Постельное белье, одеяла и другие тканевые изделия по возможности должны быть подвержены стирке в горячей воде, желательно с добавлением «Белизны». Ковры и обивку мебели можно почистить паром с хлоргексидином, добавленным в воду. Необходимо пропылесосить и продезинфицировать вентиляционные отверстия. Не забывайте упаковывать мешки из пылесоса в пакеты и утилизировать как можно быстрее.

Так же необходимо продезинфицировать или заменить все предметы ухода, ошейники, игрушки, лежанки и пр.

ВАКЦИНЫ ОТ ЛИШАЯ НЕ ЭФФЕКТИВНЫ НИ ДЛЯ ЛЕЧЕНИЯ, НИ ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ ЛИШАЯ, поэтому давно не применяются в других странах.

У животных, не имеющих очень серьезного снижения иммунитета, лишай даже без лечения проходит самостоятельно через 2-4 месяца, что иногда дает почву расценивать это исцеление как результат действия вакцины.

Контроль за эффективностью лечения осуществляется осмотром животного и поражений на коже и ежемесячными посевами. У пациента должны быть два последовательных отрицательных посева с интервалом в месяц прежде чем он будет признан излеченным. Но довольно часто случается часто повторное заражение из внешней среды.

Прогноз зависит от вида дерматофитов, общего здоровья пациента и условий окружающей среды. Будьте терпеливы! Часто проходят несколько месяцев до полного излечения. Особенную сложность в лечении представляют питомники и приюты, где практически невозможно полностью устранить заражение среды.

Что такое лишай?

Дерматофития, или в простонародье лишай, — это грибковая инфекция кожи и волос. Лишай у кошек и собак вызывается несколькими типами микроскопических грибов. У собак и кошек основным возбудителем является

Microsporum canis или Микроспорум пушистый. Грибы живут на поверхности кожи и в волосяных фолликулах, питаясь кератином – веществом, содержащемся в роговом слое кожи человека и животных. Довольно быстро распространяясь по поверхности волоса, гриб разрушает кутикулу, между чешуйками которой скапливаются споры. Таким образом, гриб окружает волос, формируя чехол, и плотно заполняет луковицу.

КАК МОЖНО ЗАРАЗИТЬСЯ ЛИШАЕМ?

Лишай у собак и кошек довольно распространенное заболевание.Лишай может передаваться при непосредственном контакте с больным животным или с предметами, где находятся споры дерматофитов. Споры от поражённых животных могут попадать в окружающую среду и сохраняться в ней до 18 месяцев. Высокая устойчивость спор пушистого микроспорума обусловлена наличием у них очень плотной шестислойной оболочки.

Хотя гриб носит название микроспорум канис (собачий), собаки в качестве источника заражения фигурируют лишь в 4% случаев. Основным источником заражения людей и других животных являются кошки (особенно уличные).

К редким животным, которые болеют микроспорией и могут стать источником заражения людей, относят обезьян, тигров, львов, диких и домашних свиней (особенно поросят), лошадей, овец, серебристо-черных лисиц, кроликов, крыс, мышей, хомяков, морских свинок и других мелких грызунов, а также птиц — голубей, ворон, кур, на которых охотятся больные кошки. Животные инфицируются от самих кошек или от их шерсти, попавшей на растения, солому, зерно. Кроме того, пушистый микроспорум могут переносить на своих лапках домашние насекомые, в частности тараканы.

Наиболее часто заболеванию подвержены маленькие котята и щенки, а также взрослые животные со слабым иммунитетом. Здоровые взрослые кошки и собаки обычно резистентны к лишаю.

Среди людей лишай чаще встречается у маленьких детей, пожилых людей и лиц с ослабленной иммунной системой.

В первые дни гриб располагается только в устье волосяной луковицы. При ближайшем рассмотрении можно заметить беловатую кольцевидную чешуйку, окружающую волос наподобие манжетки. На 6–7-й день микроспория распространяется на сами волосы, которые становятся хрупкими, обламываются над уровнем окружающей кожи на 4–6 мм и выглядят как бы подстриженными (отсюда название “стригущий лишай”). Оставшиеся пеньки выглядят тусклыми, покрыты чехликом серовато-белого цвета, представляющим собой споры гриба.

КАКИЕ СИМПТОМЫ ЛИШАЯ У КОШЕК И СОБАК?

У большинства кошек, которые служат источником заражения, очаги микроспории определяются клинически в виде округлых пятен облысения на коже мордочки, вокруг рта и носа, на наружных поверхностях ушных раковин, передних и задних лапках, на хвосте. Кожа в очагах облысения представляется шелушащейся с наличием неравномерно обломанных волос, у другой группы кошек очаги могут быть не видны на глаз, но выявляются при люминесцентном обследовании. Наконец, примерно у 2–2,4% кошек очаги не видны на глаз, не выявляются под лампой Вуда, однако при посеве вычесанных у них волос можно получить культуру пушистого микроспорума. Именно такие животные без поражений на коже и представляют основную опасность для человека, т.к. являются скрытыми носителями спор дерматофитов.

Иногда маленькие пятнышки распространяются и достигают больших размеров, принимая при этом неровную форму. Зуд, как правило, отсутствует. Кожа на поражённых участках может быть воспалённой и покрасневшей. Характерное кольцо (ободок), которое мы видим на коже людей, редко встречается у животных.

Инкубационный период составляет 10-12 дней, т.е. это означает, что в течение данного промежутка времени могут появиться поражения на коже после контакта со спорами гриба.

Подъём заболеваемости начинается в конце лета, пик приходится на октябрь-ноябрь.

ДИАГНОСТИКА ЛИШАЯ

Диагноз лишай может поставит только врач-дерматолог.

Для подтверждения диагноза применяют люминесцентное, микроскопическое и культуральное исследования.

Люминесцентное исследование: метод основан на выявлении ярко-зеленого свечения волос, пораженных грибами рода Микроспорум, при обследовании под лампой Вуда. Причина этого феномена до сих пор не установлена. Люминесцентное исследование необходимо проводить в затемненной комнате. При обследовании свежих очагов свечение может отсутствовать, что связано с недостаточным поражением волоса. Люминесцентный метод служит для:

  • определения возбудителя;
  • определения пораженных волос;
  • оценки результатов терапии;
  • контроля за животными, контактировавшими с больным;
  • определения инфекции или носительства у животных.

Необходимо понимать, что это лишь вспомогательный метод диагностики, которого недостаточно для постановки диагноза.

Микроскопическое исследование: для подтверждения грибкового происхождения заболевания микроскопическому исследованию подвергают чешуйки кожи и волосы из очагов поражений. В чешуйках из очагов на гладкой коже обнаруживаются извитые нити мицелия. При микроскопическом изучении пораженного волоса выявляется множество мелких спор на его поверхности.

Культуральное исследование (посев): проведение культуральной диагностики при положительных результатах люминесцентного и микроскопического исследований требуется для идентификации гриба-возбудителя. Метод позволяет определить род и вид возбудителя и, следовательно, проводить адекватную терапию и профилактику заболевания. Материал (чешуйки, волосы) помещают на питательную среду и ждут роста характерных колоний гриба в течение 14 дней. Также к посеву применяют для оценки эффективности лечения и выявления скрытых носителей лишая.

ЛЕЧЕНИЕ И ПРОФИЛАКТИКА ЛИШАЯ

Хочется сразу предупредить владельцев животных, что вакциной лишай не лечится, также для этих целей не подходит и местное применение мази «Ям». Если Вы привили своего домашнего питомца от лишая, то он всё равно может им заразиться. Для терапии дерматофитии применяются специальные противогрибковые средства как местные (мази, кремы, шампуни, спреи), так и системные для приёма внутрь. Курс лечения обычно занимает 8-10 недель и продолжается до получения двух отрицательных результатов посева.

К мерам профилактики относятся ограничение контакта с больными животными, изоляция больных от здоровых. Все лечебные процедуры необходимо проводить в защитных латексных перчатках и тщательно мыть руки после контакта. Ограничить свой контакт с уличными животными, особенно с кошками. Проводить обработку квартиры растворами «Белизны» в концентрации 1:10, т.к. это обеспечит уничтожение 80% спор лишая.

Наш специалист-дерматолог работает по записи. Запись по телефону 8-499-189-60-44 круглосуточно.

Осторожно: лишай! — новости ветеринарной клиники «Центр»

Практически каждый любящий владелец знает о том, что его четвероногий друг может страдать от тех же недугов, что и мы с вами. Болезни дыхательной системы, желудочно-кишечного тракта, сердца, печени, почек, ожирение и многие другие патологии встречаются у наших питомцев так же часто, как и у нас. Кроме этого существуют заразные заболевания передающиеся от животных к человеку. Одно из них – дерматофития или лишай. Так что же это такое?

ЧТО ТАКОЕ ЛИШАЙ?

В медицине заболевание называется дерматофитоз. Еще совсем недавно животных, страдающих этом недугом, подвергали усыплению из-за угрозы заражения людей, находящихся с ними в контакте. Мы живем в 21 веке! И конечно же лишай можно вылечить при своевременной диагностике и грамотной терапии.

Итак, познакомимся с этим заболеванием поближе, чтобы, как говорится, знать врага в лицо. Дерматофитозы – это инфекционные заболевания кератинизированных тканей (кожи, волос, ногтей), вызываемые грибками видов Microsporum, Trichophyton или Epidermophyton. У кошек и собак грибковые инфекции встречаются реже, чем другие кожные заболевания, но из-за угрозы заражения человека и других животных заслуживают особого внимания.

У многих людей с нормальной иммунной системой, как и у многих здоровых домашних животных, при заражении дерматофитами клинические проявления сводятся к ограниченному чешуйчатому поражению, легко отвечающему на местную терапию и имеющему тенденцию к спонтанному излечению в течение нескольких месяцев. У некоторых же пациентов развивается экссудативный дерматит, как правило, очень трудно поддающийся лечению. Такое развитие заболевания чаще встречается у новорожденных и маленьких детей, очень пожилых и находящихся в состоянии иммуносупрессии (ВИЧ-позитивных или проходящих курс химеотерапии) людей. У животных предрасположенность к дерматофитозам с яркими клиническими проявлениями наблюдается в возрасте до 12 месяцев (несовершенный клеточный иммунитет, дефицит питательных веществ, особенно белков, жирных кислот и витамина А, вирусные заболевания) и у взрослых животных, находящихся в состоянии выраженных стресса или иммуносупрессии. Также предрасполагающими к инфекции факторами являются паразитарные инвазии, повышенная влажность и температура окружающей среды, повреждения кожного покрова.

Дерматофиты могут быть выделены с кожи и волос кошек (особенно содержащихся в питомниках и приютах, посещающих выставки), не имеющих видимых поражений (чаще у персидских котят). В местах массового скопления животных серьезной проблемой является распространение грибковых спор, сохраняющих свою жизнеспособность в течение 18 месяцев (по некоторым источникам до 52 месяцев) в окружающей среде. К сожалению, животные и люди могут болеть дерматофитией многократно.

Иммунитет к этому заболеванию не вырабатывается, хотя при последующем инфицировании отмечаются более быстрое начало клинических проявлений и тенденция к сокращению продолжительности заболевания.

КЛИНИЧЕСКАЯ КАРТИНА ЗАБОЛЕВАНИЯ

Клинические симптомы заболевания, вызванного Microsporum canis у кошек и собак, могут варьировать от бессимптомного носительства до поражения кожи с образованием струпа. Типичное проявление заболевания — единичные или множественные, быстро распространяющиеся кольцеобразные поражения округлой или неправильной формы, сопровождающиеся покраснением, чешуйками и участками облысения, чаще встречающиеся на голове и конечностях. Зуд и воспаление обычно минимальны. В редких случаях лишай может проявляться обширным облысением кожи, поражением когтей, когтевых лож и даже может имитировать объемное образование кожи.

ДИАГНОСТИКА

Специалист поможет Вам разобраться в ситуации, провести тщательный клинический осмотр и необходимые диагностические процедуры.

 1. Осмотр животного в затемненном помещении при помощи лампы Вуда может показать характерное яблочно-зеленое свечение (флуоресценцию) в некоторых случаях заболевания, вызванного Microsporum canis.

2. Микроскопическое исследование волос и корочек с места поражения проводится для обнаружения спор грибов.

3. Посев материала на специальные питательные среды поможет поставить Вашему питомцу окончательный диагноз.

4. Для обследования животных с целью выявления бессимптомных носителей инфекции проводится вычесывании шерсти стерильной зубной щеткой или расческой с последующим посевом на питательную среду.

ЛЕЧЕНИЕ

Для лечения дерматофитозов проводятся обработки мест поражения, хотя у животных подобное лечение имеет меньшее значение, чем для людей. Наши питомцы покрыты шерстью, которая снижает эффективность данных процедур. Поэтому местная терапия должна рассматриваться, как вспомогательный метод лечения. При обширных поражениях более эффективным считается мытье животных специальными шампунями после предварительного состригания и уничтожения шерсти. Эта процедура может существенно уменьшить зараженность внешней среды спорами дерматофитов. Существующие вакцины от микроспории и трихофитии должны использоваться как составляющая часть терапии одновременно с системным противогрибковым препаратом. Лечение должно продолжаться в течение минимум 4-6 недель и не должно прекращаться до получения отрицательного результата посева. Это очень важно, так как результат посева может быть положительным через большое время после видимого клинического выздоровления.

ОБРАБОТКА ВНЕШНЕЙ СРЕДЫ

Помещения в доме, где находится больное животное, необходимо ежедневно пылесосить для удаления зараженных волос и спор. Поверхности, устойчивые к действию хлора, должны ежедневно обрабатываться хозяйственной хлоркой 1:10 с водой. Где возможно, используется 10% раствор формалина, пар и кипячение.

В заключение хочется отметить, что из-за разнообразия клинических проявлений не стоит брать на себя смелость ставить диагноз и проводить лечение животного самостоятельно. Уж очень велика опасность ошибки. Наличие аналогичных поражений у людей или животных, контактировавших с больным, может быть намеком на наличие дерматофитной инфекции, но лечение никогда не должно быть начато без постановки окончательного диагноза.

Ветеринарный врач-дерматолог ВК «Центр» Левятова Н.И.

Лишай у кошек и собак

Современные условия Земли достаточно благоприятны для развития грибов, в том числе очень маленьких – дрожжей и плесневых. Обычно они не вредят макроорганизмам, даже поселяясь на их коже. Но некоторые грибы патогенны и могут значительно ухудшить здоровье как людей, так и животных. Это грибы-дермтофиты. В основном они поселяются на шерсти, но могут повреждать и кожу и когти. Общераспространенное название группы заболеваний – лишай

Домашние питомцы могут заболеть микроспорией и трихофитией, даже если не посещают подъезд, улицу, не общаются с другими животными. Причина болезни – Microsporium canis (патогенные грибы), они могут сохраняться в виде спор до 1,5 лет, пережидая неблагоприятные условия окружающей среды. Microsporum gypseum – этот вид грибов може может быть причиной заболевания, но в более редких случаях, обитает он в почве. Бывают случаи когда кошки являются просто переносчиками спор, а клинические признаки заболевания у них не проявляются

Источник трихофитии – Trichophyton mentagrophytes. Этот грибок распространяется грызунами. Если кошка ходит на улицу и охотится на мышей – она в группе риска. При проживании большими группами (например, при разведении) опасность реинфицирования увеличивается. В группе риска находятся так же животные с ослабленным иммунитетом, щенки, котята. Большему риску заражения подвергаются животные с длинной, густой шерстью.

Особенно опасен Microsporum canis для джек-рассел терьеров, йоркширских терьеров, и персидских и гималайских и кошек.

Климатические условия Беларуси способствуют распространению данного заболевания, стоит помнить, что оно опасно и для людей, особенно детей, людей с ослабленным иммунитетом.

Признаки и симптомы и болезни

Клинические признаки заболевания – разнообразны. Грибки поселяются в волосяных луковицах, разрушая их, поэтому участок без волос с шелушением – основной признак. Появляются пятна чаще на морде, лапах, в хаотическом порядке. Зуд наблюдается редко. Можно наблюдать корочки и сыпь по всей поверхности кожи. У собак могут быть локальные поражения кожи – керион (узелковое поражение участка кожи, возникающее как иммунный ответ на проникновение дерматофита, это явление характерно только для собак.

Не так редко у животных, особенно подобранных на улице отмечается носительство. Т.е. они не проявляют никаких признаков заболевания, но являются источником спор. Инкубационный период может длится до 40 дней, поэтому всех животных, подобранных на улице, необходимо показать ветеринару для экспресс диагностики (люм).

Диагностика микроспории

В связи с неоднозначностью симптомов поражений дерматофитами поставить точный диагноз нельзя, лишь проведя осмотр: необходима консультация дерматолога и подтверждение лабораторно.

Если у животного подозревается лишай, то изначально проводится исследование под специальной лампой с определенной длиной волны. Эта процедура очень быстрая, абсолютно безболезненная и дешевая, но на 100% не может исключить лишай. В 40% случаях ярко-зеленого свечения может не наблюдаться. Необходимо взять соскоб, рассмотреть в микроскоп, в 70-80% случаях обнаруживаются споры дерматофитов.

В частых случаях потребуется посев, иногда гистологическое исследование

Лечение лишая у кошек и собак

В зависимости от степени поражения, самочувствия животного назначается лечение. Если животное молодо и здорово, то есть вероятность самоизлечения за 13-18 недель. Но в часто необходимо длительное лечение. Проходить лечение должны и другие животные, которые проживают под одной крышей с больным пациентом, если невозможно разделить здоровых и больных, то проводят обработки всем рекомендуемыми препаратами. Также обрабатывают места содержания животных. Все поверхности (стены и пол), мебель моют горячей водой известью (1:10) или хлоргексидином 3%. Можно использовать и специальные препараты против грибков и их спор. Вещи, коврики, все что можно постирать – стирают при температуре не менее 60 градусов, добавляя по возможности отбеливатель. Ковры, мягкую мебель необходимо обрабатывать отпаривателем. Все игрушки, когтеточки и др. предметы – необходимо обработать и уничтожить.

Для быстрейшего выздоровления и избавления от спор места поражения выстригают – для удобства обработки кожных покровов. Помимо обработки кожных покровов, животным назначают таблетки – это основное лечение трихофитии и микроспории. Эффективность лечения вакцинами против дерматофитозов доказана только у коров и лошадей, эффективность у мелких домашних животных не доказана. В среднем курс лечения продолжается от 3 до 5 месяцев до полного исчезновения болезни. Для контроля выздоровления надо ежемесячно приходить на осмотр и сдавать посевы. При наличии 2 отрицательных посевов можно уже говорить о полном выздоровлении. Продолжительность лечения зависит от общего здоровья, вида дерматофитов, внешних условий (питание, содержание, температурный режим, режим ухода).

Признаки, диагностика, лечение лишая. | Ветклиника доктора Тутаева Игоря Николаевича | Лечение животных, хирургия, стоматология, анализы

Лишай (стригущий лишай, дерматофития), Ringworm – очень заразное, инфекционное заболевание кошек, собак, многих других видов животных и человека. Причина – некоторые виды грибов (дерматофитов), вызывающих поражения кожи, шерсти, когтей. У домашних питомцев лишай вызывают три вида грибов: Microsporum canis, Microsporum gypseum (микроспория), Trichophyton mentagrophytes (трихофития).

Проявления лишая могут быть самыми разнообразными: выпадение волос, шелушение кожи, корочки (струп), камедоны, зуд (чаще при развитии вторичной микрофлоры), ну ,и, конечно, классическое проявление лишая – округлый, ограниченный участок облысения кожи, который, впрочем, встречается в практике не так часто, как об этом принято думать. В связи с этим, в научной литературе по ветеринарной дерматологии, лишай часто называется мастером маскировки. Возможно и бессимптомное носительство лишая животными. При этом лишай может передаваться другим животным.

Для диагностики лишая используются следующие методы:

1. Лампа Вуда. Является лишь ориентировочным методом исследования (при правильном использовании и корректной интерпритации).

2. Трихоскопическое исследование. Это микроскопия пораженных волос на предмет обнаружения спор грибов.

3. Посев на питательные среды с последующей микроскопией выросших колоний. Является золотым стандартом диагностики лишая.

4. Гистологическое исследование кожи. Применяется, в основном, для диагностики при подозрении на керион. Это глубокое грибковое поражение кожи в виде полушаровидных опухолеподобных образований.

Для лечения лишая используются системные и местные противогрибковые средства. ВАЖНО: ВАКЦИНЫ ОТ ЛИШАЯ (из отечественных – это поливак, вакдерм, микродерм и иже с ними) НЕ ЭФФЕКТИВНЫ ни для лечения, ни для профилактики лишая, что доказано многочисленными исследованиями. Именно по этому подобные вакцины, давным-давно сняты с производства в большинстве стран мира. Контроль эффективности лечения осуществляется путем оценки наружных поражений и посевами материала на питательные среды с интервалами в один месяц. Лечение продолжается до двух отрицательных посевов.

Споры лишая сохраняются во внешней среде до полутора лет и более. Владельцам животных необходимо знать, что некоторые породы генетически предрасположены к лишаю. У собак , например, йоркширский терьер, а у кошек – персидская порода.

Ветврач Тутаев Игорь Николаевич                                              

17.02.2015

статьи о ветеринарии «Свой Доктор»

Дерматофития (= лишай) – заболевание, вызванное  патогенными грибами из рода Microsporum, Trichophyton и Epidermophyton. Причем в 90% случаях виновником заболеваний у собак и кошек становится Microsporum canis, вызывающий поражение поверхностных слоев кожи и шерстный покров.

Дерматофития – потенциально опасное заболевание для человека. В группу риска можно отнести детей и людей с ослабленным иммунитетом. Также травмы на коже снижают ее защитные свойства, открывая «ворота» для возбудителя болезни.

Инкубационный период составляет в среднем от 1 до 3 недель.

Клинические симптомы:

Клинические признаки дерматофитии крайне разнообразны. Типичными поражениями являются округлые облысения с серыми чешуйками не беспокоящие животных. Чаще в области головы и передних конечностей, но могут быть на любой части тела. Заболевание может также проявляться в виде комедонов, фолликулита в области подбородка, миллиарного дерматита (у кошек). У персидских кошек возможно проявление более тяжелой формы болезни в виде в виде изъязвленных подкожных узелков, свищей (псевдомицетом).
 У собак иногда встречаются локализованные узелковые поражения, сопровождающиеся болью и зудом называемые «керион».

Возможно и бессимптомное носительство.

Диагностика:

Клинические проявления лишая крайне разнообразны, поэтому у врача нет возможности поставить диагноз сразу после клинического осмотра животного. Для этого требуется проведение одно или нескольких лабораторных исследований.

  1. Исследование лампой Вуда  — в положительных случаях наблюдается характерное желто-зеленое свечение. К сожалению, только 50% Microsporum canis обладают способностью к флюоресценции. Отрицательный результат не исключает наличие у животного дерматофитии.
  2. Микроскопическое исследование волос из пораженной области. Обнаружение спор в волосах является достаточным для постановки диагноза, но  споры обнаруживаются лишь в 40-70% случаев.
  3. Культивирование грибов (выращивание на средах). Данный метод диагностики требует времени (2 – 3 недели). Этот метод считается наиболее точным, но также не может исключить наличие возбудителя на коже на все 100%

В некоторых случаях для постановки диагноза используют такжеПЦР-диагностику и гистологическое исследование кожи.

Как мы видим, есть методы, способные точно подтвердить дерматофитию, но нет ни одного метода, способного на все 100% его исключить. Это самая большая трудность в диагностике данного заболевания.

Лечение:

Лечение  дерматофитии предполагает:

— местные обработки, причем не только мест поражения, а всего тела животного (для уничтожения спор лишая)

— прием системных противогрибковых  препаратов (действующие на мицелий и гифы гриба)

 — обработку внешней среды. Требуется тщательное удаление со всех поверхностей в доме шерсти и пыли, в которых могут находиться споры болезнетворного гриба. Механическая уборка с помощью пылесоса, влажная уборка с использованием хлорсодержащих дезинфектантов и дезинфектантов, на которых написано, что они эффективны от дерматофитии, ускорят процесс избавления от возбудителя болезни.

При проведении лечения важно учитывать возраст, вид, состояние здоровья пациента, а также наличие в доме других животных. Лечению подвергается не только заболевшее животное, но и все животные, находящиеся с ним в близком контакте.

Во время лечения дерматофитии от вас потребуется терпение и доверие к лечащему врачу, ведь для полного выздоровления требуется несколько месяцев терапии. Лечение данного заболевания требует ежемесячного контроля со стороны врача, и продолжается до отрицательных результатов посева.

 В условиях питомников и приютов избавиться от дерматофитии крайне сложно.

Профилактика:

В основном профилактика состоит в предупреждение контакта здоровых животных с носителями и потенциально больными.  Для этого потребуется:

— карантинирование появляющихся в квартире новых животных в сочетании с посевом на дерматофитию, которую можно провести в нашей клинике.

— кастрация гуляющих животных. Кастрация снижает потребность близкого контакта с другими представителями вида, исключая травматизацию кожи во время вязки у кошек и снижения риска травматизации кожи во время драк.

— мы не рекомендуем использовать вакцины от дерматофитии собак и кошек в виду их неэффективности ни в плане профилактики заражения, ни в плане лечения.

Если вы подозреваете наличие дерматофитии у своего любимца, обратитесь за помощью к врачу дерматологу. Не занимайтесь самостоятельным лечением своих питомцев, не все препараты, используемые в гуманной медицине безопасны для животным.

Здоровья и радости вам и вашим питомцам.

 

Ветеринарный врач, дерматолог Водина Екатерина Викторовна.

 

 

Microsporum Canis – обзор

Кошачьи и собачьи блохи могут заражать кроликов. Распространение собачьих или кошачьих блох отличается от распределения кроличьих блох, которые обычно встречаются на голове, особенно на ушах и вокруг глаз. Кошачьи и собачьи блохи обычно находятся на спине.

Инвазия блохами может вызывать сильный зуд. Имидаклоприд можно использовать для уничтожения блох.

Как Cheyletiella parasitovorax , так и Leporacarus gibbus (ранее Listrophorus gibbus ) можно обнаружить в шерсти бессимптомных кроликов.Эти клещи могут быть комменсалами.

Основные трудности ухода позволяют C . parasitovorax размножаться и вызывать заболевания. Как правило, большие участки белой чешуи располагаются вдоль спины, особенно между лопатками и у основания хвоста.

Cheyletiella parasitovorax питается кератином. Физическое удаление мертвой кожи и волос с шерсти с помощью расчески может помочь уменьшить количество паразитов.

Лечение основной причины, такой как ожирение, плохой уход за собой или заболевания зубов, так же важно, как и лечение клещей.

Инсектицидная обработка селамактином или ивермектином эффективна для уничтожения клещей. Фипронил также эффективен, но производители не пропагандируют его использование у кроликов из-за побочных реакций со смертельным исходом. Имидаклоприд неэффективен.

Cheyletiella parasitovorax является зоонозом и может вызывать легкие зудящие поражения у людей.

Меховой клещ кролика L . gibbus обычно протекает бессимптомно, хотя сообщалось о реакциях гиперчувствительности.

Demodex cuniculi был обнаружен у бессимптомных домашних кроликов.

Может возникнуть саркоптоз, хотя он редко встречается у домашних кроликов.

Сосущую вошь Haemodipsus ventricosus иногда можно обнаружить у домашних кроликов.Обычно встречается у кроликов на фермах, содержащихся в интенсивных условиях.

Инфекция дерматофитов, обычно Trichophyton mentagrophytes и Microsporum canis , может поражать кроликов, вызывая круглые, покрытые коркой, эритематозные, облысевшие области, которые сопровождаются зудом. Поражения обычно находятся на ушах и лице. Лечение аналогично другим видам.

Microsporum Canis — Creative Biolabs

Являясь ведущей компанией в области биологических исследований и разработки лекарств, Creative Biolabs завоевала хорошую репутацию благодаря успешному решению многочисленных задач по поиску противогрибковых препаратов.Основываясь на нашей передовой технологической платформе и опытных ученых, мы можем предоставить ряд услуг по поиску противогрибковых препаратов против различных грибковых заболеваний и связанных с ними грибков. Здесь мы описываем патогенный грибок Microsporum canis , который может вызывать дерматофитоз.

Введение

В составе дерматофитов Microsporum canis ( M. canis ) представляет собой патогенный бесполый грибок, естественными хозяевами которого признаны кошки и собаки.Он принадлежит к роду Microsporum , семейству Arthrodermataceae, порядку Onygenales, классу Eurotiomycetes и отделу Ascomycota.

Распределение и передача

Гриб распространен по всему миру, особенно во влажном и теплом климате, таком как Европа, восточное Средиземноморье и Южная Америка. M. canis является наиболее распространенным зоофильным дерматофитом, вызывающим у людей опоясывающий лишай и опоясывающий лишай туловища, которые очень заразны и легко передаются между животными и людьми через прямой физический контакт или через непрямой контакт с зараженными грибком материалами.

Микология M. canis

  • Макроскопически M. canis представляет собой колонию от белого до желтоватого цвета с грубо-пушистой, бархатистой/порошкообразной текстурой диаметром примерно от 3 до 9 см. Обратная сторона питательной среды колеблется от обожженно-оранжевого до желтого, что связано с метаболитами, выделяемыми грибком, и на каком штамме Microsporum canis может расти.
  • Микроскопически М.canis размножается с помощью двух конидиальных форм: многоклеточных макроконидий и одноклеточных микроконидий. Бесполое размножение гриба происходит за счет образования асимметричных макроконидий сферической формы. Макроконидии веретенообразные, бородавчатые, с толстыми и грубо шероховатыми клеточными стенками. Каждый макроконидий обычно делится на шесть или более отсеков, разделенных широкими поперечными стенками. M. canis также производит несколько грушевидных до булавовидных микроконидий.

Инжир.1 Макроскопические и микроскопические фенотипы M. canis . (Паскетти, 2017)

Патогенез M. canis

M. canis в основном вызывает дерматофитию у кошек и собак. А инфицированные животные и бесполые споры контаминированных предметов являются распространенными источниками заражения человека. Споры очень устойчивы, прикрепляются к коже и прорастают, образуя гифы, которые затем разрастаются в мертвых поверхностных слоях кожи, волосах или ногтях.

Подобно другим грибковым дерматофитам, M. canis также секретирует кератинолитическую протеазу и получает энергию от кератина в ногтях, волосах и коже. Этот организм разлагает кератин на легко усваиваемые метаболиты, которые могут быть использованы в качестве питания и вызывают некоторые повреждения кожи и волосяных фолликулов. Попадание грибка на кожу вызывает анафилактическую реакцию, в результате кожа воспаляется и грибок перемещается с места на нормальную кожу.Таким образом, формируется симптом округлой формы поражения с заживлением в центре и воспалением по краю. И наоборот, M. canis вызывает инфекцию эктотриксного типа, при которой грибок покрывает внешнюю часть стержня волоса без образования внутренних спор при поражении волос. Колонизация грибка приводит к характерным округлым или овальным невоспалительным поражениям и непокрытому волосяному стержню.

Если вы заинтересованы в услугах, связанных с грибковыми заболеваниями, пожалуйста, свяжитесь с нами для получения более подробной информации.

Артикул

  1. Паскетти, М .; и др. . Заражение Microsporum canis у педиатрических пациентов: ветеринарная перспектива. Ветеринарные науки . 2017, 4(3): 46.

Только для исследовательских целей.



ПЦР-тест для идентификации Microsporum canis | Медицинская микология

Аннотация

Microsporum canis , естественными хозяевами которого являются кошки и собаки, является наиболее распространенным зоофильным агентом, вызывающим опоясывающий лишай головы и опоясывающий лишай туловища у людей.Мы представляем здесь диагностический ПЦР-тест на M. canis , поскольку его обнаружение и идентификация вида важны для выбора лечения и понимания вероятного источника инфекции. M. canis -специфическая ПЦР оценивалась с использованием 130 клинических изолятов дерматофитов (включая M. canis [ n = 15] и 13 других видов), 10 изолятов дрожжей или плесени, 12 образцов волос и кожи животных. с или без экспериментальной инфекции M. canis и 35 образцов пациентов, включая семь образцов, положительных на M.canis и 15 дерматофит-отрицательных образцов. Все чистые культуры, образцы животных и клинические образцы с M. canis были обнаружены с помощью ПЦР-теста, тогда как ни один из других грибковых изолятов или образцов без M. canis не дал отрицательных результатов. Это исследование показывает, что ПЦР-тест для идентификации M. canis , примененный непосредственно к образцам пациентов или шерсти животных, а также к клиническим изолятам, имел 100% специфичность и чувствительность.

Введение

Традиционные диагностические методы выявления дерматофитов медленны, так как выделение подозреваемого этиологического агента может занять 2–4 недели.Поскольку клинические изоляты могут проявлять фенотипическую изменчивость, что усложняет диагностику [1,2], идентификация видов требует технических знаний. В настоящее время применение молекулярных методов для диагностики грибов становится все более распространенным, поскольку они позволяют поставить окончательный диагноз в течение 1–2 рабочих дней с повышенной чувствительностью, позволяющей начать соответствующее лечение и инфекционный контроль [3].

Microsporum canis – космополитный зоофильный дерматофит, природным резервуаром которого являются кошки и собаки.Тем не менее, он также вызывает инфекции у людей и является основным агентом дерматомикоза головы, а также часто участвует в дерматомикозе туловища [1,4,5].

В научной литературе описано несколько ПЦР-тестов на дерматофиты, но только некоторые из них коммерчески доступны [3]. Ранее мы описали метод, который позволил обнаружить Trichophyton spp. что отличало их от M. canis или Microsporium audouinii , но без видовой идентификации [6].Хотя этот анализ помог сделать рациональный выбор лечения, он не разделяет отдельные виды Microsporum и, следовательно, недостаточен для инфекционного контроля [7–9].

В этой статье мы представляем основанный на ПЦР метод идентификации M. canis с использованием ДНК, выделенной методом короткой экстракции, описанным в другом месте [10], из культур дерматофитов. Кроме того, мы изучили диагностический потенциал этого теста для обнаружения и идентификации M.canis непосредственно из образцов пациентов.

Материалы и методы

ДНК из изолятов и контролей

образцов, содержащих ДНК, были извлечены с помощью ранее описанной и запатентованной быстрой процедуры [10] из 130 изолятов дерматофитов. В исследование также были включены в общей сложности 10 контрольных образцов ДНК дрожжей, плесени и человека из Statens Serum Institut (SSI; Копенгаген, Дания). Среди изолятов дерматофитов 31 был Microsporum spp., 89 Trichophyton spp. и 10 — Epidermophyton floccosum (табл. 1).

Таблица 1

Результаты ПЦР, проведенной на ДНК, выделенной непосредственно из клинических изолятов, образцов пациентов и животных.

8
3 T. Tonsurans T. Tonsurans 5
8
  0/1 0/2 0/2 0/2
Клинические изоляты дерматофитов . № изолятов, обнаруженных с помощью праймеров Mcfor и Mcrev/№. изолирует всего .
0/10
Microsporium Audouinii 0/7
M.Canis 15/15 15/15
M. Ferugineum 0/1
M. fulvum M. fulvum 0/1
M. Gypseum 5 0/5
M. nanum 0/1 0/1
M. persicolor 2 0/1
Trichophyton Mentagrophytes 0/13
T.RUBRUM 0/23
T. Terrestre 2 0/15
0/13
T. verrucosum 0/4
T. violaceum   0/21
Недерматофитные грибы и человеческий контроль  
0/1 
Alternaria sp.
Aspergillus Flavus
Aspergillus окуривает
Candida Albicans
Human ДНК 0/2
Изолирует дерматофит от пациентов Образцы
M. audouinii положительный 0/3
М.Canis положительный 7/7 7/7
T. Mentagrophytes 40275 0/2
T.ubrum положительный 0/7
T. Tonsurans положительный 0/1
Дерматофит отрицательный 0/15
DermatoPhyte изолирует от образцов животных
M. Canis 40275 10/10
DermatoPhyte отрицательный 0 / 2 
0/10 0/7 15/15 0/5 0/1 0/1 0/13 0/1 0/2 0/2 0/2 9/7
8
8
Клинические изоляты дерматофитов . № изолятов, обнаруженных с помощью праймеров Mcfor и Mcrev/№. изолирует всего .
Epidermophyton floccosum
Microsporium audouinii
М. Canis
М. ferrugineum 0/1
M. fulvum 0/1
M.gypseum
М. nanum
М. persicolor
Trichophyton mentagrophytes
T.ubrum 0/23 0/23
T. Terrestre 2 0/15
T. Tonsurans

52 0/13

T.VerrucoSum 0/4 0/4
T. 0/219 T. 0/21 0/21
NondermatoPhyte Фунги и человеческий контроль
Acrominium Sp.   0/1 
Alternaria sp.
Aspergillus Flavus
Aspergillus окуривает
Candida Albicans
Human ДНК 0/2
Изоляты дерматофитов из образцов пациентов  
M.Audouinii положительный 0/3
M. Canis 40018 M. 2 7/7
T. Mentagrophytes 400182 0/2
T.ubrum 4002752 0/7
T. Tonsurans положительный 0/1
Dermatophyte отрицательный 0/15
DermatoPhyte изолирует от образцов животных
М.canis положительный 10/10
Дерматофит отрицательный 0/2

8
3 T. Tonsurans T. Tonsurans 5
8
  0/1 0/2 0/2 0/2
Клинические изоляты дерматофитов . № изолятов, обнаруженных с помощью праймеров Mcfor и Mcrev/№. изолирует всего .
0/10
Microsporium Audouinii 0/7
M.Canis 15/15 15/15
M. Ferugineum 0/1
M. fulvum M. fulvum 0/1
M. Gypseum 5 0/5
M. nanum 0/1 0/1
M. persicolor 2 0/1
Trichophyton Mentagrophytes 0/13
T.RUBRUM 0/23
T. Terrestre 2 0/15
0/13
T. verrucosum 0/4
T. violaceum   0/21
Недерматофитные грибы и человеческий контроль  
0/1 
Alternaria sp.
Aspergillus Flavus
Aspergillus окуривает
Candida Albicans
Human ДНК 0/2
Изолирует дерматофит от пациентов Образцы
M. audouinii положительный 0/3
М.Canis положительный 7/7 7/7
T. Mentagrophytes 40275 0/2
T.ubrum положительный 0/7
T. Tonsurans положительный 0/1
Дерматофит отрицательный 0/15
DermatoPhyte изолирует от образцов животных
M. Canis 40275 10/10
DermatoPhyte отрицательный 0 / 2 
0/10 0/7 15/15 0/5 0/1 0/1 0/13 0/1 0/2 0/2 0/2 9/7
8
8
Клинические изоляты дерматофитов . № изолятов, обнаруженных с помощью праймеров Mcfor и Mcrev/№. изолирует всего .
Epidermophyton floccosum
Microsporium audouinii
М. Canis
М. ferrugineum 0/1
M. fulvum 0/1
M.gypseum
М. nanum
М. persicolor
Trichophyton mentagrophytes
T.ubrum 0/23 0/23
T. Terrestre 2 0/15
T. Tonsurans

52 0/13

T.VerrucoSum 0/4 0/4
T. 0/219 T. 0/21 0/21
NondermatoPhyte Фунги и человеческий контроль
Acrominium Sp.   0/1 
Alternaria sp.
Aspergillus Flavus
Aspergillus окуривает
Candida Albicans
Human ДНК 0/2
Изоляты дерматофитов из образцов пациентов  
M.Audouinii положительный 0/3
M. Canis 40018 M. 2 7/7
T. Mentagrophytes 400182 0/2
T.ubrum 4002752 0/7
T. Tonsurans положительный 0/1
Dermatophyte отрицательный 0/15
DermatoPhyte изолирует от образцов животных
М.canis положительный 10/10
Дерматофит отрицательный 0/2

ДНК из образцов человека и животных

ДНК было выделено с помощью экспресс-метода [10] из образцов 35 пациентов, которые были случайным образом отобраны из клинических образцов, полученных SSI (таблица 1). Также были включены десять положительных к культуре образцов волос морских свинок, экспериментально инфицированных M. canis , и два образца неинфицированных морских свинок [11].Рутинная диагностическая процедура для клинических образцов зависела от типа образца, при этом все изоляты идентифицировали с помощью микроскопии и наблюдения за культурой, как описано ранее [12].

Microsporum canis-специфический ПЦР

Специфические праймеры Mcfor (5′ GTGTGATGGACGAC CGTCCCCCCT 3′) и Mcrev (5′ ATAATACATGGT GCGTTAGGCCAGCCTG 3′) были сконструированы из последовательности ITS1 кассеты рибосомной ДНК на основе выравнивания последовательностей, представленных в базе данных NCBI (VectorNTI, Инвитроген).Все ПЦР проводили на MasterCycler (Eppendorf) в конечном объеме 20 мкл. Условия ПЦР были оптимизированы для получения специфичности разработанных праймеров путем применения двух различных химических реагентов, т. е. приготовленной на предприятии мастер-микса для ПЦР с использованием коммерчески доступной ДНК-полимеразы Taq (Fermentas, Вильнюс, Литва) или готовой к использованию коммерчески доступной мастер-микса. × 2 × PCR Mix Plus High GC (A&A Biotechnology, Гдыня, Польша), который также содержал ДНК-полимеразу Taq, dNTP, хлорид магния и усилители ПЦР.Собственный химический состав применяли в мастер-миксе, который состоял из 2 мкл ПЦР-буфера для ДНК-полимеразы Taq, 2 мкл 25 мМ MgCl 2 , 2 мкл 25 мМ dNTP, 0,1 мкл 100 мкМ праймера Mcfor, 0,1 мкл 100 мкМ праймера Mcrev, 1 мкл ДНК-полимеразы Taq и 2 мкл образца ДНК.

Второй, коммерческий мастермикс (A&A Biotechnology), был использован в двух различных концентрациях: рекомендуемой стандартной и почти в два раза превышающей рекомендованную производителем.Реакционная смесь стандартной концентрации состояла из 10 мкл 2×PCR Mix Plus High GC, содержащего 0,1 ед/мкл ДНК-полимеразы Taq, 4 мМ MgCl 2 , 0,5 мМ каждого dNTP, усилители специфичности, стабилизаторы, красный краситель (A&A биотехнологии), 0,1 мкл 100 мкМ праймера Mcfor, 0,1 мкл 100 мкМ праймера Mcrev и 2 мкл образца ДНК. Реакционная смесь с почти вдвое большей концентрацией коммерческого химии состояла из 17,8 мкл 2 × PCR Mix Plus High GC (A&A Biotechnology), 0.1 мкл 100 мкМ праймера Mcfor, 0,1 мкл 100 мкМ праймера Mcrev и 2 мкл образца ДНК.

Условия амплификации начинались с 3-минутной предварительной денатурации при 94°C, затем следовали 40 циклов 45-секундной денатурации при 94°C, 45-секундный отжиг праймеров при 62°C и 45-секундная элонгация при 72°C. Реакцию завершали через 3 мин окончательной элонгации при 72°С. Наличие специфического продукта ПЦР размером 176 п.н. оценивали в 2% агарозном геле, окрашенном бромистым этидием. Продукты амплификации визуализировали в УФ-свете.

Результаты

Специфические праймеры, обнаруживающие ДНК M. canis , были созданы из последовательности ITS1, закодированной в рДНК, путем выравнивания последовательностей микроорганизмов, которые могут быть обнаружены в качестве патогенов или контаминантов в клинических образцах волос, кожи и ногтей (таблица 1). Выполнение ПЦР-реакций в соответствии с протоколами производителя позволяло только комбинированное обнаружение ДНК M. canis и M. audouinii без отдельной видовой идентификации, независимо от мастер-микса для ПЦР и полимеразы.Однако применение ПЦР-смеси 2 × PCR Mix Plus High GC почти в два раза выше рекомендованного количества позволило отделить и дифференцировать M. canis от M. audounii (рис. 1).

Рис. 1

Результаты ПЦР, полученные для ДНК Microsporum canis и M. audouinii . Дорожка М – маркеры молекулярной массы ДНК размером 100–1000 п.н.; Дорожка 1 – результат ПЦР-реакции с повышенной концентрацией готовой к использованию мастер-микса на M.ДНК canis ; Дорожка 2 – результат ПЦР-реакции в повышенной концентрации готовой к использованию мастер-микса на ДНК M. audouinii ; Дорожка 3 – результат ПЦР-реакции с использованием стандартной концентрации готовой к использованию мастер-микса на ДНК M. canis ; Дорожка 4 – продукт реакции ПЦР, проведенной в стандартной концентрации готовой к использованию мастер-микса на ДНК M. audouinii .

Рис. 1

Результаты ПЦР, полученные для Microsporum canis и M.ДНК audouinii . Дорожка М – маркеры молекулярной массы ДНК размером 100–1000 п.н.; Дорожка 1 – результат ПЦР-реакции в повышенной концентрации готовой к использованию мастер-микса на ДНК M. canis ; Дорожка 2 – результат ПЦР-реакции в повышенной концентрации готовой к использованию мастер-микса на ДНК M. audouinii ; Дорожка 3 – результат ПЦР-реакции с использованием стандартной концентрации готовой к использованию мастер-микса на ДНК M. canis ; Дорожка 4 – результат ПЦР-реакции в стандартной концентрации готовой к использованию мастер-микса на M.ДНК audouinii .

Оценена специфичность разработанных праймеров с использованием описанных условий ПЦР. Положительные результаты продуктов ПЦР размером 176 п.н. были получены для 15/15 образцов, содержащих ДНК M. canis , выделенных из клинических изолятов. Отсутствие специфических продуктов ПЦР для 7/7 M. audouinii , 5/5 M. gypseum , 1/1 M. nanum , 1 M. ferrugineum , 1 M. fulvum , 1 81019 M. persicolor , 99/99 образцов, содержащих ДНК видов Microsporum , отличных от , и два контрольных образца ДНК человека подтвердили, что разработанный тест имеет 100% специфичность для идентификации M.canis в чистой культуре. Более того, среди образцов шерсти и кожи животных положительные результаты были получены для 10 из 10, содержащих M. canis , а также 7/7 оказались положительными для M. canis из образцов пациентов, которые были идентифицированы в ходе рутинного исследования в Лаборатория микологии и паразитологии ССИ. Образцы животных отрицательного контроля и образцы здоровых людей были M. canis ПЦР-отрицательными (таблица 1).

Обсуждение

Мы представляем здесь разработку ПЦР-анализа для идентификации M.canis , который достиг 100% чувствительности и специфичности за счет модификации состава мастер-микса для ПЦР. Применение мастер-микса 2 × PCR Master Mix Plus High GC в соответствии с протоколом производителя (A&A Biotechnology) привело к амплификации ожидаемого фрагмента 176 п.н. ДНК M. canis . Однако продукты ПЦР также были получены для образцов, содержащих M. audouinii . Поскольку подобные тесты уже существуют и нашли применение в рутинной практике [6], необходимо было оптимизировать протокол таким образом, чтобы результаты были специфичны для амплификации М.ДНК canis . Необходимая специфичность праймеров была получена только эмпирическим путем с использованием нестандартных для той же химии условий, когда применялась почти в два раза более высокая, чем обычно, концентрация ПЦР-буфера, dNTPs, Taq ДНК-полимеразы и энхансеров ПЦР, присутствующих в мастермиксе. Специфичность анализа была подтверждена на ДНК, выделенной из клинических изолятов.

Потенциальное применение этого анализа в качестве диагностического теста, а не только для целей идентификации, также было подтверждено на ДНК, извлеченной непосредственно из образцов пациентов.Однако внедрение описанного теста в рутинную микологическую лабораторию требует дополнительного детального исследования большого количества образцов пациентов и других требований в соответствии с общими правилами валидации теста [13].

В заключение, M. canis -специфический ПЦР-тест, который имеет 100% чувствительность и специфичность, может быть применен к изолятам и клиническим образцам. Анализ выполняется быстро, что имеет большое значение в клинических условиях, поскольку видов M. canis по сравнению с видами Trichophyton менее чувствительны к тербинафину, а своевременное начало надлежащего лечения может предотвратить необратимые последствия, такие как рубцовая алопеция. .

Декларация об интересах: D.M.L.S. получил почетные выплаты за выступление от Galderma, Medinor A/S, Schering-Plough и LEO Pharma, а также гранты на поездки от Galderma, Pfizer и Swedish Orphan. МКА получал оплату за презентации от имени Astellas, Merck, Pfizer, Schering-Plough и Gilead, выступал в качестве консультанта для Merck, Astellas, Spepharm, Pcovery и Pfizer, получал исследовательские гранты от Astellas, Pfizer, Gilead и Merck и получал гранты на поездки от Астеллас, Мерк и Пфайзер.Другие авторы не имеют никакого конфликта, чтобы сообщить. Только авторы несут ответственность за содержание и написание статьи.

Каталожные номера

1., .

Дерматофиты

,

Clin Microbiol Rev

,

1995

, vol.

8

 (стр. 

240

259

)2.,  ,  .

Онихомикоз: классификация и диагностика

,

J Препараты Дерматол

,

2004

, том.

3

 (стр. 

51

56

)3., . ,

Curr Opin Infect Dis

,

2012

, vol.

25

 (стр. 

126

134

)4.,  ,  , и др.

Лабораторное обследование дерматофитных инфекций в Дании за 10-летний период

88

 (стр. 

614

616

)5.,  .

Дерматофиты: диагностика и лечение

,

J Am Acad Dermatol

,

2006

, vol.

54

 (стр. 

1050

1055

)6.,  ,  ,  .

Диагностические ПЦР-тесты на инфекции Microsporum audouinii, M. canis и Trichophyton

48

 (стр. 

486

490

)7.,  ,  ,  ,  .

Чувствительность дерматофитов к противогрибковым азолам, проверенная in vitro методами макро- и микроразведений в бульоне

50

 (стр.

1

5

)8.,  ,  .

Гризеофульвин по сравнению с тербинафином при лечении дерматомикоза головы: метаанализ рандомизированных клинических исследований

,

Педиатрия

,

2004

, том.

114

 (стр. 

1312

1315

)9.,  ,  .

Мета-анализ рандомизированных контролируемых исследований, сравнивающих гризеофульвин и тербинафин при лечении дерматофитии головы

64

 (стр. 

663

670

)10.,  ,  .

Пятичасовая диагностика дерматофитных инфекций ногтей со специфическим выявлением Trichophyton rubrum

,

J Clin Microbiol

,

2007

, vol.

45

 (стр. 

1200

1204

)11.,  ,  , и др.

Экспериментальная модель дерматофитии на морской свинке: простой и полезный инструмент для оценки новых средств диагностики и противогрибковых препаратов

46

 (стр. 

303

313 ​​

)12.,  ,  ,  . , 

Атлас клинических грибов

2000

Утрехт, Нидерланды

CBS

13.,  .

ПЦР-диагностика грибковых инфекций человека

,

Expert Rev Antiinfect Ther

,

2009

, vol.

7

 (стр. 

1201

1221

)

Эта статья была впервые опубликована в Интернете на Early Online 10 января 2013 г.

© 2013 ИШАМ

Дезинфицирующие средства для питомника против Microsporum canis и Trichophyton sp.

Противогрибковая эффективность обычно используемых в питомниках дезинфицирующих средств для больших поверхностей была проверена с использованием естественно инфицированного материала необработанных животных ( M. canis и Trichophyton sp.), пропитанного и мацерированного, но нефильтрованного, оставляющего видимые флуоресцирующие волоски и/или чешуйки на поверхности. тестовый инокулят, чтобы создать надежный вызов. Дезинфицирующие средства включали гипохлорит натрия (1 : 32 и 1 : 100), энилконазол (1 : 100), ускоренную перекись водорода (1 : 16), пероксимоносульфат калия (1% и 2%) и гипохлорит кальция «сухой отбеливатель».«Дезинфицирующие средства тестировали при разведении тестируемого инокулята к дезинфицирующему средству 1 : 10, 1 : 5 и 1 : 1 при времени контакта 10 мин. Хорошая эффективность была определена как дезинфицирующее средство, приводящее к отсутствию роста. В контрольных чашках выросло >300 колоний каждого патогена на чашку. Энилконазол, гипохлорит натрия (все разведения), ускоренная перекись водорода и 2% пероксимоносульфат калия (но не 1%) ингибировали весь рост обоих патогенов в разведениях 1 : 10, 1 : 5 и 1 : 1. Гипохлорит кальция не показал противогрибковой эффективности (>300 колоний на чашку).Энилконазол (1 : 100), гипохлорит натрия (1 : 32 или 1 : 100), ускоренная перекись водорода (1 : 16) и 2% пероксимоносульфат калия рекомендуются для обеззараживания конур, подвергшихся воздействию возбудителей дерматофитов.

1. Введение

Дезинфекция окружающей среды является важным компонентом профилактики дерматофитии и борьбы с ней и имеет особое значение в помещениях, где содержится большое количество животных (например, приюты для животных, псарни и т. д.). При выборе дезинфицирующего средства для питомника необходимо учитывать множество факторов, включая, помимо прочего, эффективность, отсутствие токсичности или раздражающего действия на животных или рабочих, стоимость, простоту применения и отсутствие коррозионного воздействия на поверхности, например клетки.

Хотя гипохлорит натрия является широко используемым дезинфицирующим средством в помещениях, где содержатся несколько животных, растет интерес к использованию недорогих, простых в использовании и менее агрессивных для клеток соединений. Одним из таких соединений является гипохлорит кальция, также известный как «сухой отбеливатель», потому что он поставляется в гранулах и упаковках. Это соединение чаще всего используется для дезинфекции пищевых продуктов, бассейнов и источников воды [1–3]. Он также используется в безрецептурных чистящих и дезинфицирующих средствах для ванных комнат, а также для уничтожения мха и водорослей.Это все более популярное дезинфицирующее средство в питомниках, потому что оно автоматически разбавляется и дозируется с помощью водяного домика, недорогое и не очень коррозионное [4].

Хотя коммерческие продукты не заявляют о противогрибковой эффективности, в непрофессиональной литературе о дезинфицирующих средствах для питомников часто утверждается, что они эффективны для контроля и лечения дерматофитии; однако опубликованных исследований, подтверждающих это, найти не удалось.

Одним из лабораторных методов, используемых для проверки эффективности противогрибковых дезинфицирующих средств в полевых условиях, является модель изолированных зараженных спор [5].В этой методологии инфицированные волосы, собранные у необработанных животных, используются для получения тестового инокулята, содержащего естественный инфекционный материал. В этой модели тестовый посевной материал фильтруется для удаления органического мусора. Обоснованная критика инокулята при тестировании изолированных инфекционных спор заключается в том, что он может быть недостаточно надежным тестом, поскольку в нем отсутствует органический материал, в частности, частицы инфекционных волосков или чешуек. Если этап фильтрования пропущен, тестовый инокулят содержит заметное количество органического материала, т. е. небольшие кусочки инфицированных волосков, чешуек и мусора, подобные тем, которые можно было бы найти на поверхности конуры, считавшейся «явно чистой» до применения инокулята. дезинфицирующее средство.Цель этого исследования состояла в том, чтобы определить противогрибковую эффективность шести дезинфицирующих средств для питомников против сильного заражения естественным инфекционным материалом.

2. Материалы и методы
2.1. Тестовые патогены

Microsporum canis был получен от котят с нелеченными спонтанными инфекциями. Для тестирования Trichophyton sp. возбудителя инвазионные корки получены от молоди ежей со спонтанными нелеченными инфекциями (т.erinacei ).

2.2. Приготовление суспензий инфекционных спор

Суспензии инфекционных спор готовили с использованием модификации ранее опубликованного метода [5]. Вкратце, естественный инфекционный материал замачивали в стерильной воде на 15 минут и трижды измельчали ​​стерильным лезвием скальпеля. С помощью мацератора ткани суспензию мацерировали до получения непрозрачного раствора. В этом исследовании раствор не фильтровали, и в нем были отчетливо видны волосы и чешуя.Исследование суспензии спор M. canis под лампой Вуда выявило большое количество флуоресцирующих частиц, а микроскопическое исследование Trichophyton sp. взвеси были обнаружены неповрежденные корки и идентифицируемые чешуйки.

2.3. Грибковые культуры

Mycosel Agar (Becton Dickinson, Cokeyville, MD, USA) использовали для грибковых культур. Планшеты инкубировали при 30°С и ежедневно проверяли рост в течение 14 дней. Колониеобразующие единицы (КОЕ) для каждой чашки определяли как максимальное количество колоний на 14-й день культивирования.Потенциальные возбудители идентифицировали микроскопически с использованием установленных морфологических критериев.

2.4. Дезинфицирующие средства для питомника

Испытываемые дезинфицирующие средства включали 5,5% гипохлорит натрия, разбавленный 1 : 32 и 1 :100, ускоренную перекись водорода в соотношении 1 : 16 (концентрат Accel 4,25%, Virox Technologies, Оквилл, Онтарио, Канада), пероксимоносульфат калия в концентрации 1% и 2 % (трифектант: ветохинол, Форт-Уэрт, Техас), и энилконазол в соотношении 1 : 100 (Clinafarm, Schering Plough Animal Health, Union, New Jersey) и гипохлорит кальция (Wysiwash, Wysiwash, South Daytona, FL, USA).Для гипохлорита кальция один литр испытуемого раствора собирали в середине потока после того, как шланг работал в течение 3 минут. Все испытуемые растворы были приготовлены свежими и использованы в течение 3 часов. В качестве необработанного и обработанного контроля использовали стерильную дистиллированную воду и 5,5% гипохлорит натрия (разведение 1 : 10).

2.5. Протокол испытаний

Суспензии инфекционных спор тестировали при разведении спор 1 : 10, 1 : 5 и 1 : 1 в дезинфицирующем средстве при времени контакта 10 мин. Тестовые растворы встряхивали четыре раза (0 мин, 5 мин, 9 мин и 10 мин) в течение времени контакта, чтобы обеспечить адекватное воздействие дезинфицирующего средства на споры.Четыре аликвоты по 100  мкл л каждой испытуемой суспензии инокулировали на чашки с культурой грибов путем равномерного распределения суспензии по поверхности стерильной петлей. Исходные суспензии неоднократно встряхивали до и между отборами проб, чтобы убедиться, что грибковые споры и волоски не оседают в пробирке. Все испытания проводились в трехкратной повторности. Дезинфицирующие средства, не обладающие противогрибковой эффективностью, были повторно протестированы с использованием изолированных инфицированных спор, то есть отфильтрованного тестового инокулята.

2.6. Анализ данных

Были собраны описательные данные.Количество колониеобразующих единиц на чашку подсчитывали и представляли как среднее значение ± стандартное отклонение. Для целей данного исследования хорошей эффективностью считалось дезинфицирующее средство, не вызывающее роста.

3. Результаты и обсуждение

A 100  μ L инокулята каждого патогена стало слишком много, чтобы подсчитать колонии на чашке. Серийные разведения оценивали 5 × 10 5 и 8 × 10 6 инфекционных спор на мл для M. canis и Trichophyton sp., соответственно. Однако это число, вероятно, занижает тестовый инокулят, поскольку оно не может объяснить заражение спорами частиц волос или чешуек. До, в середине и после эксперимента 100  μ л инокулята выросли >300  КОЕ/чашка для обоих патогенов. Энилконазол, AHP, 2% пероксимоносульфат калия и все разведения гипохлорита натрия оказывали 100% фунгицидное действие (таблица 1) против обоих патогенов. Гипохлорит кальция не обладал фунгицидной активностью (таблица 1) в этой тестовой модели и при повторном тестировании с использованием изолированных инфицированных спор (т.е., отфильтрованный тестовый инокулят). Считалось, что 1% пероксимоносульфат калия не обладает хорошей эффективностью по сравнению с 2% пероксимоносульфатом калия.

8 9163 9 9163 916 31 0

M. canis

9139 Trichophyton sp.

1: 10 1: 5 1: 1 1: 10 1: 10 1: 5 1: 1


Water> 100 > 100> 100> 100> 100> 100> 100> 100> 100 9 9 9 0 0 0 0 0 0
натрия Гипохлорит 1: 32 0 0 0 0 0 0 0
0 0 0 0 0 0
AHP 1: 16 0 0 0 0 0 0 Энильконазол 1: 100 0 0 0 0 0
2% пероксимоносульфат кали 0 0 0 0 0 0
1% пероксимоносульфат кали 4 ± 5 15 ± 6 23 ± 3 0 0 2 ± 3 7 ± 4 7 ± 4 7 ± 4> 100> 100> 100> 100> 100> 100

Среднее значение чашек с агаром ± стандартное отклонение.
AHP: ускоренная перекись водорода (Accel).

В этом исследовании гипохлорит кальция не продемонстрировал фунгицидной активности в отношении природного инфекционного материала. Скорее всего, это связано с тем, что этот продукт является в первую очередь альгицидом.

Обеззараживание поверхностей, подвергшихся воздействию дерматофитов, требует «жесткой очистки». В частности, весь грубый материал должен быть механически удален, а область промыта моющим средством до видимой чистоты, промыта для удаления остатков моющих средств и удалена избытком воды, чтобы предотвратить разбавление дезинфицирующего средства, а затем, наконец, распылено дезинфицирующим средством.Дезинфицирующие средства предназначены для уничтожения любых оставшихся спор, не удаленных механической очисткой. В связи с этим важно отметить две вещи. Во-первых, было строгое 10-минутное время контакта. Во-вторых, хотя тестовые суспензии содержали видимые остатки волос и кожи, в них отсутствовали другие органические материалы (например, фекалии, сыворотка и пища), которые могли бы предотвратить контакт между инфекционным материалом и дезинфицирующим средством. Несмотря на то, что эти дезинфицирующие средства были очень эффективны против сильного заражения спорами, правильная подготовка поверхности по-прежнему необходима для хорошей санитарии.

Одной из причин, по которой было проведено это исследование, был ответ на анекдотические комментарии о том, что исходные результаты моделирования изолированных инфекционных спор не были репрезентативными для «реального мира», поскольку волосы и мусор были удалены. Результаты этого исследования аналогичны тем, которые были опубликованы ранее с использованием отфильтрованных изолированных инфекционных спор либо в тестах с суспензией, либо в тестах на текстильных дезинфицирующих средствах [5–7]. Это является подтверждающим доказательством того, что исходная модель изолированных инфекционных спор является надежной проблемой и что данные, полученные с использованием этой модели, достоверны.Преимущество модели изолированных инфекционных спор по сравнению с процедурой, используемой в этом исследовании, заключалось в том, что требуется меньше естественного инфекционного материала.

4. Выводы и клиническая значимость

На практике эти данные свидетельствуют о том, что при удалении явных органических остатков и визуально чистой поверхности следует использовать гипохлорит натрия (1 : 32 и 1 : 100), энилконазол 1 : 16, 2% пероксимоносульфат калия или ускоренная перекись водорода 1 : 16 с временем контакта 10 мин являются эффективным дезинфицирующим средством для любого остаточного оставшегося инфекционного материала дерматофитии.

Конфликт интересов

Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов в связи с публикацией данной статьи.

Благодарности

Этот проект финансировался Школой ветеринарной медицины Фонда животных-компаньонов Университета Висконсин-Мэдисон и Фондом Winn Foundation for Feline Research. Автор благодарит Лорен Маллен и сотрудников Центра защиты животных Сан-Франциско (Сан-Франциско, Калифорния, США) за предоставление ресурсов для этого исследования, а также доктора К.Джули Леви, Колледж ветеринарной медицины Университета Флориды, за пожертвование системы дозирования гипохлорита кальция.

Инвазия человеческих ногтей Microsporum canis

Инвазия человеческих ногтей Microsporum canis

Дайан Флорес Далла Лана 1 *, Паула Регинатто 2 , Уильям Лопес 3 , Марилен Хеннинг Вайнштейн 3 , Александр Менегелло Фуэнтефриа 1,2

6

1 Programa de Pós-Graduacão em Ciências Farmacêuticas, Федеральный университет Риу-Гранди-ду-Сул, Бразилия

2 Programa de Pós-graduação em Microbiologia Agrícola e do Ambiente, Федеральный университет Риу-Гранди-ду-Сул, Бразилия

3 Centro de Biotechnologia, Федеральный университет Риу-Гранди-ду-Сул, Бразилия


Мы сообщаем об инвазии ногтевой пластины человека дерматофитным видом Microsporum canis , который недавно был описан как биопленкообразователь, на изображениях, полученных с помощью сканирующей электронной микроскопии (СЭМ).С помощью изображений можно было засвидетельствовать размножение и агрегацию гиф на ногтях, а также образование биопленки как фактора патогенности и вирулентности вида в случаях онихомикоза.


Дерматофиты являются основными этиологическими агентами онихомикозов, клинически известных трудностью лечения. Это серьезное грибковое заболевание, поскольку оно может вызывать парестезии, зуд, боль, трудности при выполнении повседневных действий и нарушать социальные взаимодействия 1 .Онихомикозы широко распространены во всем мире, особенно у пожилых людей 2,3 . В настоящее время биопленки связывают с патогенезом онихомикоза1. Если ранее дерматофиты считались планктонными нитчатыми грибами, то недавние исследования выявили способность этой группы грибов образовывать биопленки [4]. Биопленки, по общему признанию, представляют собой агрегаты сидячих клеток, которые прикрепляются к биологической системе, такой как ногтевая пластинка, через внеклеточный матрикс, который их окружает 1,4 .При этом они проявляют повышенную вирулентность, могут вырабатывать устойчивость к противогрибковым препаратам и ускользать от иммунной системы. Некоторые дерматофиты, в основном относящиеся к роду Trichophyton , образуют биопленки in vitro 5 . Кроме того, Trichophyton rubrum и Trichophyton mentagrophytes начинают формировать биопленки через 3 часа, которые полностью формируются к 72 часам 5 . Таким образом, биопленочный процесс для Trichophyton spp. уже хорошо определен в литературе 5,6 .Наша исследовательская группа впервые сообщила о формировании биопленки Microsporum canis в 2017 году 7 . Принимая во внимание это открытие, цель данного исследования заключалась в том, чтобы впервые оценить инвазию этого вида дерматофитов в ногтевую пластину человека с помощью изображений сканирующей электронной микроскопии (СЭМ).

Фрагменты здоровых ногтей донорские ногти здоровых людей без грибкового заболевания разрезали на фрагменты размером примерно 0,5 см и промывали дистиллированной водой для удаления грязи и мусора.Перед хранением их обрабатывали в автоклаве при 121 °C в течение 30 минут для удаления любых поверхностных загрязнений, которые могли повлиять на тесты. Затем их хранили в закрытых пробирках при комнатной температуре (28 °C) до использования. Эти фрагменты ногтей помещали на пластину с картофельно-декстрозным агаром (Gibco®). Инокулят M. canis (клинический изолят MCA 01, из коллекции микологии Исследовательской группы прикладной микологии Федерального университета Риу-Гранди-ду-Сул) добавляли (100 мкл, 10 5 UFC/мл) на фрагменты ногтей на чашках с картофельно-декстрозным агаром.Ногти без инокулята также инкубировали в тех же условиях, что и контроль. Затем проводили инкубацию (35°С) в течение 7 дней. По истечении этого периода образцы были подготовлены для анализа на сканирующем электронном микроскопе (СЭМ). Клинический штамм M. canis был идентифицирован по макроморфологии культуры и очень характерной микроморфологии (прямое исследование) — веретенообразным макроконидиям, которые определяют вид, вместе с симптомами пациента и эпидемиологическими данными.

Фиксацию образцов проводили 500 мкл глутарового альдегида (2,5%, тип 1, Sigma-Aldrich), разбавленного какодилатом натрия (0,1 моль/л, pH 7,2, Sigma-Aldrich), и выдерживали в течение 1 часа при комнатной температуре. температура 8 . Затем образцы промывали, постфиксировали, обезвоживали, перемещали, сушили, опрыскивали и подвергали химической сушке. СЭМ Carl Zeiss EVO® (MA10, Оберкохен, Германия), работающий при напряжении 10 кВ, использовался для наблюдения и фотографирования образцов при различном увеличении.

СЭМ-изображения

демонстрируют ногтевую пластину человека без инфекции (контроль), в ее нормальном виде (рис. 1 — A, B и C) и инвазию ногтя гифами М.canis , можно ультраструктурно наблюдать, как патогены колонизируют и исследуют поверхность ногтя (рис. 1 — D, E и F). Стратегия образования биопленки M. canis в ногте человека также очевидна (внеклеточный матрикс; рис. 1 – Е и F – белые стрелки), что способствует вирулентности, патогенности и резистентности 1 .

Рисунок 1: Сканирующие электронные микрофотографии инвазии ногтей человека Microsporum canis , иллюстрирующие характеристики биопленки и детали поражения ногтей.(A, B и C) Общий вид нормального человеческого ногтя без грибковой инвазии при разном увеличении. (D, E и F) Инвазия гиф M. canis на ногтевую пластину с наблюдением присутствия биопленки, продуцируемой этим видом (указана белыми стрелками), при различном увеличении.

О механизмах инвазии ногтей, Monod et al. 9 сообщалось, что патогенный грибок проникает в ноготь через латеральную ногтевую бороздку, дистальную подногтевую область или дорсальную поверхность ногтевой пластины, вызывая поверхностный онихомикоз, или более глубоко при проникновении под поверхность ногтя 9 .Инфекции дерматофитов обычно являются результатом интертриго, в то время как повторяющиеся деформации ногтя, особенно большого пальца стопы, могут играть главную роль в инвазии плесени 9 . На рисунке 1 можно наблюдать, что ногтевая инвазия M. canis происходит по всему расширению ногтевой пластины (рис. 1 — D, E и F) с поверхностной фиксацией гиф и развитием экзополимерного матрикса. Исследования механизмов инвазии ногтей, а также других ороговевших тканей, в первую очередь сосредоточены на секретируемых протеазах 10,11 .Все дерматофиты хорошо растут в среде, содержащей твердый кератин в качестве единственного источника углерода и азота, и большинство секретируемых белков в культуральном супернатанте представляют собой протеазы 10,11 .

Онихомикоз признан важной проблемой общественного здравоохранения из-за его высокой распространенности и терапевтических проблем с высокой скоростью прогрессирования до хронических поражений и рецидивов 1 . Следует отметить, что случаи микоза ногтей, вызванного M. canis , редки, а некоторые вызваны расчесыванием головы (хронические).Таким образом, эти результаты подтверждают лучшее знание инвазии ногтей человека дерматофитами, особенно для недавно открытого вида, образующего биопленку — M. canis , и укрепляют использование метода СЭМ для анализа инфекционных грибковых процессов.

  1. Липнер С.Р., Шер Р.К. Онихомикоз: клинический обзор и диагностика. J Am Acad Дерматол. 2019; 80: 835–51.
  2. Папини М., Пираччини Б.М., Дифонзо Э. и др. Эпидемиология онихомикоза в Италии: данные о распространенности и выявление факторов риска.Микозы. 2015 г.; 58: 659–64.
  3. Васконселлос С., Перейра С.К., Соуза М.С. и др. Идентификация видов грибов при онихомикозе пожилых людей в учреждениях. Бюстгальтеры Дерматол. 2013; 88: 377–80.
  4. Brilhante RSN, Correia EEM, Guedes GMM и др. Количественный и структурный анализ биопленкообразующей способности дерматофитов in vitro и ex vivo. J Med Microbiol. 2017; 66: 1045–52.
  5. Коста-Орланди CB, Сарди Дж. К., Сантос, Коннектикут, и др. In vitro характеристика Trichophyton rubrum и T.биопленки ментагрофитов. Биообрастание. 2014; 30: 719–27.
  6. Гупта А.К., Дайгл Д., Карвьель Дж.Л. Роль биопленок при онихомикозах. J Am Acad Дерматол. 2016; 74: 1241–1246.
  7. Danielli LJ, Lopes W, Vainstein MH, et al. Образование биопленки Microsporum canis. Клин Микробиол Инфект. 2017; 23: 941–942.
  8. Dalla Lana DF, Carvalho AR, Lopes W, et al. Структурный дизайн δ-лактонов для разработки новых противогрибковых препаратов: чувствительность, механизм действия и токсичность.Фолиа микробиол. 2019. doi: 10.1007/s12223-018-00675-y.
  9. Моно М., Мехул Б. Недавние открытия в области онихомикоза и их применение для надлежащего лечения. Дж Грибы. 2019; 20: 1–10.
  10. Гидди К., Моно М., Барблан Дж. и др. Комплексный анализ белков, секретируемых Trichophyton rubrum и Trichophyton violaceum в условиях in vitro. J Протеом Res. 2007 г.; 6: 3081–92.
  11. Шриранганадане Д., Варидель П., Саламин К. и др. Идентификация новых секретируемых протеаз во время внеклеточного протеолиза дерматофитами при кислом рН.Протеомика. 2011 г.; 11: 4422–33.

 

Перспектива обеззараживания окружающей среды

Ссылки

1. Chermette R, Ferreiro L, Guillot J. Дерматофитозы у животных. Mycopathologia 2008;166:385–405.10.1007/s11046-008-9102-7Поиск в Google Scholar

2. Seebacher C, Bouchara JP, Mignon B. Обновления эпидемиологии дерматофитных инфекций. Mycopathologia 2008;166:335–2.10.1007/s11046-008-9100-9Поиск в Google Scholar

3.Atzori L, Aste N, Aste N, Pau M. Tinea faciei, вызванный Microsporum canis у детей: обследование 46 случаев в округе Кальяри (Италия). Pediatr Dermatol 2012;29:409–13.10.1111/j.1525-1470.2011.01595.xSearch in Google Scholar

4. Mancianti F, Nardoni S, Corazza M, D’Achille P, Ponticelli C. Обнаружение Microsporum canis в окружающей среде артроспоры в домах инфицированных кошек и собак. J Feline Med Surg 2003;11:91–5.10.1016/j.jfms.2008.05.006Поиск в Google Scholar

5.Спаркс А.Х., Верретт Г., Стоукс С., Граффид-Джонс Т.Дж. Microsporum canis: инаппарантное носительство кошками и жизнеспособность артроспор. J Small Anim Pract 1994;35:397–401.10.1111/j.1748-5827.1994.tb03861.xSearch in Google Scholar

6. Moriello KA, Hondzo H. Эффективность дезинфицирующих средств, содержащих ускоренную перекись водорода, против конидиальных артроспор и изолированных инфекционных спор Microsporum canis и Trichophyton sp. Vet Dermatol 2014;25:191–4.10.1111/vde.12122Поиск в Google Scholar

7.Мориелло К.А., Кундер Д., Хондзо Х. Эффективность восьми коммерческих дезинфицирующих средств против Microsporum canis и Trichophyton spp. инфекционные споры на экспериментально зараженной текстильной поверхности. Vet Dermatol 2013;24:621–3.10.1111/vde.12074Search in Google Scholar

8. Deblonde T, Hartemann P. Воздействие медицинских рецептов на окружающую среду: оценка рисков и опасностей стойкости, биоаккумуляции и токсичности фармацевтических препаратов. Public Health 2013;127:312–27.10.1016/j.puhe.2013.01.026Поиск в Google Scholar

9.Виган М. Эфирные масла: возобновление интереса и токсичность. Eur J Dermatol 2010;20:685–92.Поиск в Google Scholar

10. Zuzarte M, Goncalves MJ, Cavaleiro C, Canhoto J, Vale-Silva L, Silva MJ, et al. Химический состав и противогрибковая активность эфирных масел Lavandula viridis L’Her. J Med Microbiol 2011;60:612–8.10.1099/jmm.0.027748-0Поиск в Google Scholar

11. Mugnaini L, Nardoni S, Pinto L, Pistelli L, Leonardi M, Pisseri F, et al. Противогрибковая активность некоторых эфирных масел in vitro и in vivo в отношении кошачьих изолятов Microsporum canis.J Mycol Méd 2012;22:179–84.10.1016/j.mycmed.2012.04.003Поиск в Google Scholar

12. Nardoni S, Mugnaini L, Pistelli L, Leonardi M, Sanna V, Perrucci S, et al. Клиническая и микологическая оценка растительного противогрибкового препарата при собачьем дерматите Malassezia. J Myc Méd 2014;24:234–40.10.1016/j.mycmed.2014.02.005Поиск в Google Scholar

13. Nguefack J, Letha V, Amvam Zollob PH, Mathur SB. Оценка пяти эфирных масел ароматических растений Камеруна для борьбы с порчей пищевых продуктов и грибками, продуцирующими микотоксины.Int J Food Microbiol 2004;94:329–34.10.1016/j.ijfoodmicro.2004.02.017Search in Google Scholar

14. Burt S. Эфирные масла: их антибактериальные свойства и потенциальное применение в пищевых продуктах – обзор. Int J Food Microbiol 2004;1:223–53.10.1016/j.ijfoodmicro.2004.03.022Поиск в Google Scholar

15. Fisher K, Phillips CA. Влияние эфирных масел лимона, апельсина и бергамота и их компонентов на выживаемость Campylobacter jejuni, Escherichia coli O157, Listeria monocytogenes, Bacillus cereus и Staphylococcus aureus in vitro и в пищевых системах.J Appl Microbiol 2006;101:1232–40.10.1111/j.1365-2672.2006.03035.xSearch in Google Scholar

16. Moussaieff A, Mechoulam R. Смола босвеллии: от религиозных церемоний до медицинских целей; обзор in-vitro, in-vivo и клинических испытаний. J Pharm Pharmacol 2009;61:1281–93.10.1211/jpp/61.10.0003Поиск в Google Scholar

17. Huang Y, Zhao J, Zhou L, Wang J, Gong Y, Chen X, et al. Противогрибковая активность эфирного масла плодов Illicium verum и его основного компонента транс-анетола.Molecules 2010;15:7558–69.10.3390/molecules15117558Search in Google Scholar

18. Wang H, Liu Y. Химический состав и антибактериальная активность эфирных масел из разных частей литсеи кубебы. Chem Biodivers 2010;7:229–35.10.1002/cbdv.200800349Поиск в Google Scholar

19. Wang GW, Hu WT, Huang BK, Qin LP. Illicium verum: обзор его ботаники, традиционного использования, химии и фармакологии. J Ethnopharmacol 2011;136:10–20.10.1016/j.jep.2011.04.051Поиск в Google Scholar

20.Хан У.А., Рахман Х., Ниаз З., Касим М., Хан Дж., Тайяба Р.Б. и др. Антибактериальная активность некоторых лекарственных растений в отношении отдельных патогенных бактерий человека. Eur J Microbiol Immunol 2013;3:272–4.10.1556/EuJMI.3.2013.4.6Search in Google Scholar

21. Pistelli L, Mancianti F, Bertoli A, Cioni PL, Leonardi M, Pisseri F, et al. Противогрибковая активность эфирных масел некоторых ароматических растений в отношении собачьих изолятов Malassezia pachydermatis: анализ in vitro. Open Mycol J 2012;6:17–21.10.2174/1874437001206010017Поиск в Google Scholar

22.Национальный институт стандартов и технологий. Масс-спектральная библиотека NIST/EPA/NIH, версия 1.7. Norwalk: Perkin Elmer, 1999. Поиск в Google Scholar

23. Adams RP. Идентификация эфирных масел методом капиллярной газовой хроматографии/масс-спектроскопии. Кэрол Стрим, Иллинойс, США: Allured Publishing, 2013. Поиск в Google Scholar

24. Шин С., Лим С. Противогрибковые эффекты растительных эфирных масел отдельно и в сочетании с кетоконазолом против Trichophyton spp. J Appl Microbiol 2004;97:1289–96.10.1111/j.1365-2672.2004.02417.xПоиск в Google Scholar

25. Gogoi P, Baruah P, Nath SC. Противогрибковая активность эфирного масла литсеи кубебы. Pers J Ess Oil Res 1997;9:213–15.10.1080/10412905.1997.9699462Search in Google Scholar

26. Aminifad M, Mohammadi S. Эфирные масла для контроля Botrytis cinerea in vitro и in vivo на плодах сливы. J Sci Food Agric 2013;93:348–53.10.1002/jsfa.5765Search in Google Scholar

27. Bouzenna H, Krichen L. Pelargoniumgraveolens L’Her.эфирные масла Artemisia arborescens L.: химический состав, противогрибковая активность в отношении Rhizoctonia solani и инсектицидная активность в отношении Rhysopertha dominica. Nat Prod Res 2013;27:841–6.10.1080/14786419.2012.711325Поиск в Google Scholar

28. Де М., Де А.К., Сен П., Банерджи А.Б. Антимикробные свойства звездчатого аниса (Illicium verum Hook f). Phytother Res 2002;16:94–5.10.1002/ptr.989Search in Google Scholar

29. Angioni A, Barra A, Coroneo V, Dessi S, Cabras P. Химический состав, сезонная изменчивость и противогрибковая активность Lavandula stoechas L .подвид эфирные масла stoechas из стебля/листьев и цветов. J Agric Food Chem 2006;54:4364–70.10.1021/jf0603329Поиск в Google Scholar

30. Зоре Г.Б., Такре А.Д., Ратод В., Каруппаил С.М. Оценка антикандидозного потенциала компонентов масла герани в отношении клинических изолятов Candida albicans, дифференциально чувствительных к флуконазолу: ингибирование роста, диморфизм и сенсибилизация. Mycoses 2011;54:e99–109.10.1111/j.1439-0507.2009.01852.xSearch in Google Scholar

31. Luo M, Jiang LK, Huang YX, Xiao M, Li B, Zou GL, et al.Влияние цитраля на споры Aspergillus flavus с помощью методов квазиупругого рассеяния света и мультиплексного микроанализа. Acta Biochim Biophys Sin (Шанхай) 2004; 36:277–83.10.1093/abbs/36.4.277Поиск в Google Scholar

32. Лалко Дж., Апи А.М. Исследование потенциала кожной сенсибилизации различных эфирных масел в анализе местных лимфатических узлов. Food Chem Toxicol 2006;44:739–46.10.1016/j.fct.2005.10.006Search in Google Scholar

33. Magnano M, Salvani S, Vincenzi C, Nino M, Tosti A.Контактные аллергены и раздражители в бытовых моющих и чистящих средствах. Contact Dermatitis 2009;61:337–41.10.1111/j.1600-0536.2009.01647.xSearch in Google Scholar

Microsporum canis: Uses, Interactions, Mechanism of Action

/1мл) + Acrothecium robustum (0,0021 г/1мл) + Apiospora montagnei (0,0021 г/1мл) + Humicola grisea (0,0021 г/1мл) + Microsporum audouinii (0,0021 г/1мл) + Mycocladus corymbiferus (0.0,0021 г/1мл) + Phycomyces blakesleeanus (0,0021 г/1мл) + Sporotrichum pruinosum (0,0021 г/1мл) + Stachybotrys chartarum (0,0021 г/1мл) + Syncephalastrum racemosum (0,0021 г/1мл) + Tetracoccosporium paxianum (0,0021 г/1мл) + Verticillium albo-atrum (0,0021 г/1 мл) + Acrothecium robustum (0,077 г/20 мл) + Apiospora montagnei (0,077 г/20 мл) + Microsporum audouinii (0.077 г/20 мл) + Phycomyces blakesleeanus (0,077 г/20 мл) + Sporotrichum pruinosum (0,077 г/20 мл) + Stachybotrys chartarum (0,077 г/20 мл) + Syncephalastrum racemosum (0,077 г/20 мл) + Tetracoccosporium paxianum (0,077 г/20 мл) + Thermomyces lanuginosus (0,077 г/20 мл) + Trichosporon cutaneum (0,077 г/20 мл) + Verticillium albo-atrum (0,077 г/20 мл)
C Moldporum canis Mixture
Инъекции, раствор Внутрикожно; Подкожно Антиген Лабораториз, Инк.0,0042 г/1мл) + Acrothecium robustum (0,0042 г/1мл) + Apiospora montagnei (0,0042 г/1мл) + Humicola grisea (0,0042 г/1мл) + Microsporum audouinii (0,0042 г/1мл) + Mycocladus corymbiferus (0,0042 г/1мл) + Phycomyces blakesleeanus (0,0042 г/1мл) + Sporotrichum pruinosum (0,0042 г/1мл) + Stachybotrys chartarum (0,0042 г/1мл) + Syncephalastrum racemosum (0,0042 г/1мл) + Tetracoccosporium paxianum (0,0042 г/1мл) + Verticillium albo-atrum (0,0042 г/1 мл) Инъекции, раствор Внутрикожно; Подкожно Antigen Laboratories, Inc. 1974-03-23 ​​ Не применимо US US
C Смесь плесени C Canis Microsporum (0,0083 г / 1 мл) + Acrothecium Robustum (0,0083 г / 1 мл) + APIOSPORA MONTAGNEI (0,0083 г / 1 мл) (0,0083 г / 1 мл) + Humicola grisea (0,0083 г/1мл) + Microsporum audouinii (0,0083 г/1мл) + Mycocladus corymbiferus (0,0083 г/1мл) + Phycomyces blakesleeanus (0,0083 г/1мл) + Sporotrichum pruinosum (0,0083 г/1мл) + Stachybotryschartarum (0,0083 г/1мл) г/1 мл) + Syncephalastrum racemosum (0.0083 г/1мл) + Tetracoccosporium paxianum (0,0083 г/1мл) + Verticillium albo-atrum (0,0083 г/1мл) Инъекции, раствор Внутрикожно; Подкожный Antigen Laboratories, Inc. 1992-04-13 Инъекции, раствор Подкожно; (Подкожно Allergy Laboratories, Inc. 1967-12-07 Неприменимо США
Лечебный набор TS128871 Microsporum canis000042 г/1мл) + Acrothecium robustum (0,00042 г/1мл) + Apiospora montagnei (0,00042 г/1мл) + Canis lupus familiaris волос (0,005 г/1мл) + Cladosporium cladosporioides (0,005 г/1мл) + Cochliobolus spicifer (0,00036 г/ 1мл) + Colletotrichum coccodes (0,00036 г/1мл) + Felis catus hair (500 [БАУ]/1мл) + Humicola grisea (0,00042 г/1мл) + Hypomyces perniciosus (0,00036 г/1мл) + Khuskia oryzae (0,00036 г/1мл) + Microascus brevicaulis (0,00036 г/1 мл) + Microsporum audouinii (0,00042 г/1 мл) + Mycocladus corymbiferus (0.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.

Адрес: г. Чайковский, Пермский край ул. Промышленная 8/8,
Телефоны: 8 34241 2-10-80 [email protected]
© «Феникс», 2019