Разное

Карантин по микроспории: Консультация для родителей «Карантин по микроспории в ДОУ»

Содержание

Микроспория

Микроспория

Микотическое заболевание кожных покровов, ногтевых пластинок и волос, которое называется микроспорией, мало кому о чем-то говорит. В народе больше распространено название «стригущий лишай». Статистика такова: из ста тысяч человек плесневые кератинофильные грибки, являющиеся возбудителями микроспории, поражают 50-70. При этом микроспория у детей пяти-десятилетнего возраста встречается в разы чаще. Это связано с тем, что инфекция передается преимущественно контактным путем через обсемененные грибком микроспории предметы.

Пути заражения

Дети же часто не задумываются о том, что они трогают, и чем это может обернуться. Кроме того, ворота для инфекции – это потертые локти и коленки, ранки на руках, ногах, а у детей такие повреждения – не редкость. Да и мытьем рук во время прогулки и после нее они не всегда озадачиваются.

Микроспория подразделяется на два вида: антропонозная и зооантропонозная. Первый вид заболевания крайне редко встречается. Антропонозную микроспорию вызывают микроспорумы, которые вокруг себя оставляет инфицированный человек. Живет этот грибок недолго, поэтому и вероятность заразиться таким способом крайне мала. Другое дело зоофильные микроспорумы. Именно их чаще всего обнаруживают в роговом слое кожи и в волосах детей. Источник заражения – больное животное, а дети так любят на улице играть с бездомными щенками и котятами.

После попадания в организм ребенка, грибок себя сначала не проявляет. Первые симптомы микроспории можно увидеть спустя 14-90 дней после заражения. За это время грибок успевает размножиться в волосяных кутикулах, разрушить их. Микроорганизмы полностью окружают волосинки, заполняют мицелием луковицы, формируя вокруг них плотный чехол.

Симптомы микроспории и ее лечение

Лечение микроспории у детей необходимо начинать сразу же после обнаружения первых признаков поражения грибком. Зачастую недуг дает знать о себе внезапно возникающей лихорадкой и увеличением лимфатических узлов. Спустя несколько дней волосяные участки кожного покрова головы ребенка покрываются очагами поражения. Они имеют четко выраженные границы. Обычно очаги овальные или круглые. Одновременно у детей возникает и микроспория гладкой кожи: появляется мелкая красная сыпь, розоватые пятна. Волосы в очаговой зоне надламываются.


Наверняка не нужно говорить о том, что первые симптомы болезни, высыпания на коже — это повод сразу обращаться к

дерматологу. Решение о том, как вылечить микроспорию у ребенка должен принимать врач на основе проведенных анализов. В запущенном случае могут понадобиться и антибиотики. Лечение обычно занимает от четырех до пяти-шести недель. Карантин – первая мера при микроспории у детей. Следует обезопасить всех членов семьи от заражения, выделив маленькому пациенту отдельную комнату, посуду и вещи.

Ежедневно утром пораженные участки кожи малыша необходимо смазывать спиртовым раствором йода. Вечером обработка осуществляется мазями, содержащими серу, салициловую кислоту и деготь. К сожалению, волосы вокруг пораженного участка придется сбрить. Голову мыть надо будет каждый день, используя только детское мыло. Такие процедуры проводят в течение 12-15 дней.

В помещении влажную уборку следует проводить несколько раз в день, используя дезинфицирующие растворы. Этими же средствами обрабатывают все игрушки, с которыми контактировал маленький пациент. Что касается постельного и нательного белья и одежды, то после стирки его обязательно следует гладить.

И помните, лучшая профилактика микроспории у детей – соблюдение правил гигиены, частое мытье рук и понимание того, что предметы и бездомные животные на улице могут таить в себе опасность.

Источник: http://my-sunshine.ru/mikrosporiya-u-detei#ixzz3k31vRveX

Микроспория у детей — карантин в детском саду и школе, сроки и мероприятия

Микроспория — заболевание, вызываемое грибками. Оно отличается высоким уровнем контагиозности и чаще всего поражает детей. Заразиться микроспорией можно как от человека, так и животного.

 Человек живет в окружении огромного количества микроорганизмов. Одни из них совершенно безвредны, а другие могут стать причиной серьезной патологии. Среди патогенных микроорганизмов особое место занимают грибки рода Микроспорум, вызывающие такое заболевание, как микроспория. Болезнь отличается высокой контагиозностью и требует немедленного лечения.

Что такое микроспория у детей

Описанное заболевание поражает не только эпидермис человека, но и волосяной покров. Грибок провоцирует повышенную ломкость волос и их выпадение. В результате на месте заражения формируются проплешины. Заражение микроспорией происходит от больного ребенка к здоровому. Переносчиками грибка могут стать:

  • предметы быта;
  • общая одежда;
  • постельное белье;
  • питомцы.

Вызвать микроспорию у ребенка могут грибки различных видов:

  • зоофильные. Обитают на кошках, собаках и других животных. Заразиться можно даже от домашнего питомца;
  • геофильные. Обитают в почве. Могут сохранять свою жизнеспособность на протяжении многих месяцев;
  • антропофильные. Главными переносчиками стригущего лишая являются люди. Чаще всего заболевание поражает детей.

Сколько дней длится и чем опасно

Длительность болезни у ребенка зависит от нескольких факторов:

  • типа возбудителя болезни;
  • эффективности подобранных лекарственных средств;
  • общего состояния организма и т.п.

Инкубационный период лишая напрямую зависит от вида грибка. Например, если ребенок заразился антропофильной формой микроспории, то в этом случае инкубационный период может составлять более месяца. Геофильные и зоофильные грибки развиваются намного быстрее. В этом случае инкубационный период составит около 1-2 недель.

Фото: fotohay / Shutterstock.com

При начатом на ранних сроках лечении, стригущий лишай не несет никакой угрозы здоровью и жизни ребенка. Со временем волосы полностью отрастают и закрывают место болезни. На коже не остается даже едва заметных шрамов. Осложнениями микроспории можно назвать:

  • формирование психологических проблем на фоне облысения;
  • появление язвочек и нагноений на месте лишая;
  • развитие необратимого выпадения волос.

Осложнения на фоне микроспории возникают крайне редко. Для этого иммунитет человека должен быть максимально ослаблен.

Карантин в детском саду и школе

Так как микроспория у детей отличается высокой контагиозностью, то риск передачи грибка от больного ребенка к здоровому достаточно велик. Именно поэтому, при обнаружении патологии у одного из воспитанников детского сада на группу накладывается карантин. Для этого необходимо:

  • подать заявление в САНПиН с соответствующими требованиями. При этом следует описать проблему;
  • отстранить больного ребенка от посещения коллектива до момента полного выздоровления;
  • проводить ежедневные осмотры детей.

Карантин по микроспории длиться в течение 45 дней. Если за это время новых случаев заболевания зафиксировано не будет, то карантин снимают. Если же обнаружатся новые случаи, то карантин продлят еще на 45 дней.

Если ребенок общался с другими зараженными детьми, необходимо:

  • вымыть его с использованием фунгицидного мыла. При этом уделить внимание необходимо всем участкам тела, включая голову;
  • сменить одежду, в которой он был в саду. Грязное белье необходимо постирать при высокой температуре и тщательно прогладить;
  • посетить дерматолога через неделю после контакта. За это время грибок должен успеть проявить себя. Первые симптомы могут быть незаметны родителям, но их увидит врач;
  • в случае заражения ребенку необходимо выделить отдельное полотенце, расческу и прочие предметы гигиены. Детскую комнату необходимо регулярно проветривать. Если в семье есть еще дети, важно следить за их состоянием и минимизировать контакты.

Симптомы микроспории верхней части головы

У всех видов патологии есть ряд общих симптомов. Однако имеются и индивидуальные признаки. Они зависят от типа грибка, вызвавшего лишай. Общими симптомами болезни являются:

  • наличие пятен красного цвета. Это самый первый признак патологии. Пятна могут появиться как на чистой коже, так и волосистой части головы. Нередко лишай поражает брови и ресницы;
  • появление белых чешуек. Спустя некоторое время пятна начинают бледнеть. На их поверхности образуются белые чешуйки;
  • возникновение зуда. Зуд возникает не во всех случаях. Однако если ребенок постоянно чешет голову, стоит обратить внимание на этот симптом;
  • повышение температуры тела. Возможно в редких случаях. Чаще всего наблюдается при ослабленном иммунитете;
  • набухание лимфоузлов. Еще один необязательный симптом. Обычно воспаляются лимфоузлы, расположенные в непосредственной близости от очага поражения.

Симптомы микроспории волосистой части головы требует медицинского вмешательства. Необходимо посетить дерматолога. 

Микроспория головы

Чаще всего микроспорией волосистой части головы болеют дети детсадовского, младшего и среднего школьных возрастов. У взрослых заболевание встречается крайне редко. С годами волосяные луковицы начинают вырабатывать кислоту, которая подавляет активность микроорганизма. Отмечено, что чаще микроспорией болеют дети со светлыми волосами. Болезнь сопровождается следующими симптомами:

  • на коже появляются участки шелушения. Характерные чешуйки обволакивают корни волос;
  • волосы начинают ломаться. Обычно выпадение волос начинается через неделю после появления первых симптомов. Волос выпадает не полностью. На его месте остается короткий стержень длинной не более 5 мм;
  • покраснение кожи. На месте заражения образуется красное пятно, покрытое чешуйками. Кожу покрывают споры грибка. В это время ребенок наиболее заразен для окружающих.

Микроспория волосистой части головы бывает:

  • инфильтративная. В этом случае очаг поражения имеет красный цвет и возвышается над здоровой кожей. Место поражения выглядит воспаленным;
  • экссудативная. Сопровождается отечностью тканей. На месте заражения видны мелкие пузырьки. Из-за выделений чешуйки склеиваются. Возникает заметная корочка;
  • гнойная. Сопровождается сильным воспалительным процессом. Кожа на месте покраснения плотная и толстая. На поверхности заметны пузырьки с гнойным содержимым;
  • себорейная. Сопровождается поредением волос. На коже образуются чешуйки желтоватого цвета;
  • . Для нее характерно образование большого количества очагов поражения. Сами пятна не имеют точных контуров, а волосы ломаются почти под корень.

Лечение микроспории у детей

Назначение препаратов против микроспории происходит только после посещения врача. Если место поражения локализуется на гладкой коже, назначаются препараты местного действия. Сюда относятся мази, крема, растворы и спреи. Лечение продолжается до полного исчезновения симптомов патологии.

 При поражении волосистой части головы схема лечения выглядит по-другому. Пациенту назначается комплексная терапия, включающая прием противогрибковых лекарств и препаратов местного применения.

Терапия микроспории:

  • при поражении эпидермиса, необходимо раз в неделю сбривать волосы с этого участка. Также можно использовать специальные пластыри. Это позволит предотвратить дальнейшее распространение инфекции;
  • если лишай возник на голове, ее также необходимо побрить. Повторять процедуру необходимо 2 раза в неделю до момента полного выздоровления;
  • для мытья головы используйте специальные шампуни. В их состав должны входить кетоконазол или сульфид селена. Также в целях гигиены можно использовать обычное дегтярное мыло.

Лекарственные средства для внутреннего применения

Лечение микроспории волосистой части головы включает прием ряда препаратов. Они подбираются врачом на основании стадии болезни. Ее возбудителя и индивидуальных особенностей организма ребенка. В число препаратов против стригущего лишая входят

  • Ламизил;
  • Тербизил и т.п.

Курс лечения невозможен без препаратов местного назначения. Для обработки кожи головы и кожи на теле используются

  • Изоконазол;
  • Экзифин;
  • серная мазь и т.п.

Лечение лишая подручными средствами

Народные методы лечения микроспории на голове могут применяться в качестве дополнения к основному лечению. Народные методы можно использовать для профилактики и лечения болезни. Например, при контакте с зараженным человеком.

Примочки с луковым соком

Для приготовления мази необходимо взять:

  • головку репчатого лука;
  • салфетки или ватные диски.

Лук очищают от шелухи и измельчают при помощи блендера. Из полученной кашицы отжимают сок. Салфетку или ватный диск пропитывают свежим соком и прикладывают к месту поражения. Лечение повторяют ежедневно до полного выздоровления. Мазь хранят в холодильнике.

Фото: Elenlackner / Pixabay.com

Настойка из цветов сирени

Для приготовления средства вам потребуется:

  • ½ стакана медицинского спирта;
  • 2 столовых ложки сухих или свежих цветов сирени.

Цветы заливают спиртом и настаивают в течение 5 дней в темном сухом месте. После этого настойку процеживают и сливают в стеклянную банку. Полученным средством протирают воспаленные участки. Процедуру повторяют 3-5 раз в сутки.

Фото: Pezibear / Pixabay.com

Отвар чистотела

Чтобы приготовить отвар чистотела необходимо взять:

  • 1 столовую ложку сухой травы;
  • стакан кипятка.

Цветы заливают кипятком и ставят на водяную баню. Подготовленную смесь прогревают в течение 15 минут. После этого отвар остужают и процеживают. Остывшее лекарство используют для протирания пораженных участков кожи на голове. Процедуру повторяют 3 раза в сутки.

Фото: kie-ker / Pixabay.com

Чеснок с медом

Для приготовления мази необходимо взять:

  • 3 зубчика чеснока;
  • столовую ложку меда.

Чеснок измельчают до состояния кашицы. Добавляют мед и все тщательно перемешивают. Полученную массу мажут на ватный диск и прикладывают к лишаю. Держать примочку 15 минут. После этого кожу желательно не мочить в течение пары часов.

Фото: B3R3N1C3 / Pixabay.com

Примочки из лимона

Содержащаяся в фрукте кислота угнетает споры грибка. Для приготовления примочки необходимо взять целый лимон и нарезать его на дольки. Полученную дольку прикладывают к лишаю на минуту. Процедуру повторяют 3 раза в день. Курс лечения составляет 3-5 дней.

Фото: silviarita / Pixabay.com

Масло чайного дерева

Это растение эффективно против многих кожных инфекций. Оно обеззараживает и подавляет активность грибка. Для лечения микроспории необходимо смазывать пораженный участок кожи 3 раза в день. Курс лечения продолжается до полного выздоровления. Средство не используют при наличии аллергии на масло.

Йодовый раствор

Для приготовления смеси необходимо взять йод и водку в равных пропорциях. Оба средства смешивают до получения однородной массы. Полученной жидкостью обрабатывают участки лишая по нескольку раз в день. Процедуру повторяют до полного выздоровления. Средство хорошо помогает при диагнозе микроспория гладкой кожи у детей.

Фото: Original_Frank / Pixabay.com

Профилактика стригущего лишая

Так как лишай отличается высокой контагиозностью его профилактике отводится особое место. Для того чтобы избежать заражения необходимо:

  • избегать ношения влажной обуви и одежды;
  • регулярно мыться. Раз в неделю можно использовать специальное фунгицидное мыло;
  • избегать ношения чужой одежды и обуви;
  • использовать только личные предметы для гигиены. Не стоит вытираться чужим полотенцем или брать чужую мочалку;
  • не одевать чужие головные уборы;
  • сократить общение с больными людьми;
  • не гладить бездомных животных;
  • заниматься поддержанием и укреплением иммунитета.

Микроспория волосистой части головы у детей — достаточно неприятное заболевание. Чтобы избежать заражения необходимо соблюдать простые рекомендации. При подозрении на развитие лишая необходимо записаться на прием к дерматологу.

Насколько полезен был этот пост?

Нажмите на звезду, чтобы оценить его!

Submit Rating

Средний рейтинг / 5. Подсчет голосов:

сроки мероприятия, сколько дней, прием в группу

Маленькие дети больше подвержены грибковым заболеваниям по причине слаборазвитого иммунитета. Стригущий лишай наиболее часто диагностируется у детей дошкольного возраста. Болезнь относят к группе сильно заразных. Опасность состоит в том, что споры грибков очень устойчивы к воздействиям внешней среды и могут сохранять свою активность на протяжении 1,5-2 лет, поэтому при заражении одного ребенка из группы обязательно нужно поставить в известность руководство и срочно ввести карантин по микроспории в детском саду.

При стригущем лишае может быть объявлен карантин

Проявления на голове

Первые симптомы заболевания проявляются сыпью на голове, бровях или по линии роста ресниц. Сыпь представляет собой отдельные розовые или красноватые пятна, обособленные от здоровых участков. Диаметр новообразований примерно равен 3,5 см. Вокруг пятна можно наблюдать валик, образуемый пузырьками. Уже через несколько дней гиперемия на воспаленных участках проходит и начинается шелушение. Грибок питается кератином – белком, обеспечивающим рост волос. Грибковые споры заполняют фолликул, образуя плотный купол, что мешает нормальному питанию волос, поэтому в месте высыпаний они становятся хрупкими, начинают обламываться. Легкая форма микроспории у детей может выглядеть как сильное проявление перхоти, появившейся внезапно. На месте воспаленных участков кожи может ощущаться легкий или сильный зуд, что доставляет дискомфорт. Ребенок становится плаксивым, капризным, иногда наблюдаются нарушения сна. При поражении грибком микроспорум могут наблюдаться симптомы интоксикации, лихорадка, повышение температуры, воспаление периферических лимфоузлов. Такое осложнение получило название парша, оно является довольно опасным и сложным в лечении. У детей-аллергиков проявления микроспории будут выражены сильнее. Заражение грибком микроспорума для них чревато появлением эритематозно-отечной формы. Для этого типа характерно сильное жжение, зуд, появление гнойного инфильтрата, отечность. Поверхность новообразований покрывается мелкими пузырьками, которые часто изливаются, что приводит к образованию твердой корочки.

Стригущий лишай вызывает сильный зуд и дискомфорт

Проявления на коже

Лишай гладкой кожи характеризуется появлением крупных новообразований. Очаги, круглые или овальные, окружены плотным валиком, немного возвышаются над здоровыми участками. В центральной части очага кожа светлая, покрыта мелкими чешуйками. Новообразования могут сливаться, образуя большие очаги с неровными краями. Высыпания могут локализоваться на любом участке тела, но чаще всего поражают кожу лица, шеи, верхнего плечевого пояса. Пораженные участки гладкой кожи сильно зудят.

Диагностирование

Как только родители заподозрили лишай, необходимо идти на прием к участковому педиатру. Он занимается лечением совместно с инфекционистом и дерматологом. Новообразования рассматривают под лампой Вуда. В затемненном помещении под светом прибора они приобретают изумрудный цвет. Кроме того, назначают соскоб. В качестве биоматериала для проведения исследований используют кожу и волоски, фолликулы с пораженных участков. Такие исследования должны быть проведены не менее 5 раз. Чтобы врач мог видеть полную картину, необходимо сдать анализы крови и мочи. При отклонениях от нормы их пересдают раз в 10 дней.

Проводят биохимические анализы крови, чтобы исключить онкологию, аутоиммунные заболевания (красную волчанку).

Исследование проводят перед началом лечения и повторно через месяц. При подтверждении диагноза стригущий лишай, педиатр обязан сообщить руководству детского дошкольного заведения и СЭС о возможной вспышке заболевания и потребовать закрыть группу на карантин.

Лампа Вуда поможет поставить правильный диагноз

Согласно СанПиН, в течение 3 дней должно быть подано извещение в ФБУЗ и его филиалы, территориально-кожные диспансерные организации о выявлении пациента больного стригущим лишаем, диагностируемым впервые. При появлении каждого нового случая его рассматривают, как первично диагностируемое. В дошкольном заведении сведения о пациенте должны быть внесены в журнал по отчетности об инфекционных заболеваниях. Это обязательный документ, который ведется во всех учебных заведениях. Он необходим для контроля количества больных и фиксации обмена информацией между здравоохранительными организациями.

Мероприятия в детском саду

Микроспория у детей: карантин в детском саду, мероприятия, сроки рассмотрим ниже.

  • Больного изолируют до госпитализации или пока ребенка не заберут домой. В срочном порядке производится дезинфекция. Нужно убрать всю одежду пациента, постельное, игрушки, снять ковры.
  • Ребенок не допускается к посещению детсада, бассейнов, различных кружков до подтверждения выздоровления. Отсутствие грибка должно быть 3 раза доказано анализами крови и посредством исследования под лампой Вуда.
  • Чтобы обеспечить максимальную изоляцию, пациенту выделяют отдельное помещение, принадлежащие ему предметы индивидуального назначения нужно изъять из общего обихода.
  • В течение первых 3 дней после сообщения о больных стригущим лишаем медицинские работники дошкольного заведения должны осмотреть всю группу детей, контактировавших с больным. Регулярная проверка должна проводиться вплоть до принятия окончательных мер по дезинфекции. Наблюдение проводится 1-2 раза в 7-10 дней в течение 3 недель с применением люминесцентных ламп. Обязательным условием является ведение листа наблюдений, в которой вносят данные каждого медосмотра.

Текущая дезинфекция должна быть организована здравоохранительным органом, который диагностировал заболевание. Предупредительные меры до момента госпитализации или пока ребенка не заберут домой организует детсад.

Больного ребенка следует изолировать

Дезинфекция является проведенной вовремя, если мероприятия были начаты не позже чем через 3 часа с момента выявления первых признаков заболевания. Дезинфекция в саду предполагает следующие мероприятия:

  • стирка всех постельных принадлежностей, одежды, мягких игрушек;
  • обработка паром матрасов и подушек;
  • прожарка игрушек из других материалов;
  • кипячение всей посуды;
  • обработка обуви;
  • пароочистительная обработка ковровых покрытий;
  • полы и все поверхности, включая кровати, окна, подоконники моют с помощью дезинфицирующих средств или хлора.

Заключительный этап дезинфекции проводится, когда ребенок поступает на лечение в госпиталь или же выходит снова в сад, вне зависимости от сроков лечения и выздоровления. Иногда ее проводят 2 раза. Заключительная дезинфекция должна быть проведена не только в детсаду, но и дома у больного. При выявлении нескольких больных должно быть организовано исследование территории детского учреждения. Проводят обследование медработники дерматовенерологического профиля и эпидемиолог санэпидемнадзора. Эпидемиолог определяет сроки конечной дезинфекции и объемы работ.

Медработник, который диагностировал заболевание, должен провести разъяснительные работы по выявлению источника заражения.

Согласно санитарным нормам, на территории учреждения не должно находиться бродячих собак и кошек, а в самом детсаду ни в одной группе не должны находиться аквариумы с рыбами и рептилиями, попугаи и пр. животные. Для них должен быть оборудован отдельный живой уголок, в который детей водят только воспитатели. Если в детском саду был выявлен лишай, карантин длится месяц и дольше. Сроки устанавливаются в соответствии с длительностью инкубационного периода. При заражении от человека инкубация проходит на протяжении 8-30 дней, от животного – 4-7. Карантин длится дольше 30 дней, если наблюдается вспышка вируса в нескольких группах. В это время сад должен закрываться на несколько дней для проведения дезинфекции, ее не должны выполнять в присутствии здоровых детей.

Дезинфекция в садике обязательна

Рекомендации для родителей

Всех родителей, которые были в контакте с пациентом, больным лишаем, тех, кто только собирается выходить в сад после длительной болезни, необходимо проинформировать о возможности заражения. Родителям контактных детей следует провести профилактические мероприятия:

  • перестирать всю одежду, в которой был ребенок, при высокотемпературном режиме;
  • продезинфицировать квартиру антисептиками;
  • сходить на прием к участковому педиатру, узнать о дальнейших действиях, попросить назначить иммунотерапию.

Тем, кто только что перенес инфекционное заболевание, рекомендуется воздержаться от посещения детского сада до момента, пока ситуация не стабилизируется, потому как ребенок со слабым иммунитетом рискует заболеть сильнее, чем остальные. Обычно в детсадах группы не закрывают, а ответственность за выбор водить или не водить малыша возлагают на родителей. Если вы не хотите, чтоб ваш ребенок заразился, попросите у врача справку на время, пока эпидемия не закончится. Врач обязан выдать такой документ и не имеет права вам отказать.

Заключение

Микроспория гладкой кожи и волосистой части головы у детей носит сезонный характер, отличается высокой степенью заразности при непосредственном контакте с больным или его вещами, предметами мебели и пр. Во избежание распространения заболевания необходимо следить, чтобы в детсадах проводились вовремя все профилактические мероприятия и соблюдались нормы, предписанные СанПиН. Хотя заболевание не несет в себе большой опасности при своевременном лечении, важно помнить, что для детей-аллергиков и малышей, страдающих от хронических системных расстройств, заболевание может стать тяжелым испытанием. Родителям, ребенок которых не заболел, все же рекомендуется воздержаться от посещения детского учреждения пока ситуация не будет стабильной.

Памятка по микроспории

Микроспорией называется грибковое заболевание, вызываемое грибами рода Microsporum. Оно поражает кожу и волосы, в отдельных случаях – ногти, вызывает повреждения на коже, схожие с повреждениями при трихофитии, и тоже носит название «стригущий лишай».

Способы заражения микроспорией:

Микроспория передается человеку от других людей и от животных. Основными разносчиками микроспории являются кошки и собаки или через вещи, на которые попали чешуйки кожи, инфицированные грибами. Кроме того, споры гриба способны сохранять жизнеспособность и в почве в течение 1-3 месяцев. Положение усугубляется тем, что очень часто у домашних любимцев болезнь протекает незаметно, без особых внешних симптомов.

На территории нашей страны микроспорию вызывают два вида грибов:

  1. Microsporum canis – это микроспория, передающаяся от животных, так называемая зоофильная микроспория;
  2. Microsporum ferruginium – заболевание, передающееся от человека к человеку, антропофильная микроспория.

Микроспория является наиболее контагиозным заболеванием из всех кожных микозов: это значит, что человек, сталкивающийся с грибком, имеет высокий риск им заразиться, заболевание легко распространяется. Во внешних проявлениях и по своей природе эта болезнь имеет много общего с трихофитией. При  микроспории высыпания на коже развиваются быстрее и имеют тенденцию к распространению по коже и к слиянию. В очагах высыпаний образуются фигуры из двойных и тройных колец, что исключено при трихофитии.

Подъем заболеваемости микроспорией наблюдается в конце лета, поскольку летом контакты детей с животными более часты, чем в холодное время года. Пик заболеваемости приходит на конец осени.

Инкубационный период:

—  при зоофильной микроспории длится 5-7 дней.

— при антропонозной микроспории длится 4 — 6 недель.

Виды микроспории:

В качестве двух основных разновидностей микроспории различают микроспорию гладкой кожи и микроспорию волосистой части головы. Они отличаются внешними проявлениями, характером протекания заболевания, способом лечения.

При микроспории гладкой кожи очаг заболевания имеет вид кольца. Проявление болезни начинается с красного, слегка гиперемированного пятна. Через короткое время в середине зоны поражения признаки воспаления исчезают. Кожа шелушится, на ней могут возникать пузырьки, корочки. Неприятные ощущения почти отсутствуют, иногда пораженная кожа может слегка чесаться. Обычно микроспория гладкой кожи характеризуется небольшим количеством очагов, их размер также невелик, от 1 до 3 сантиметров. Они могут располагаться на коже лица, на шее, предплечьях, плечах.

Микроспория волосистой части головы обычно поражает детей, возрастом до 12- 13 лет. При микроспории волосистой части головы очаги имеют диаметр от 2 до 5 сантиметров, с покрасневшей кожей, иногда вокруг основного пятна могут располагаться маленькие диаметром по полсантиметра. Место локализации – в основном, макушка головы, височные области. Волосы начинают обламываться уже на 6 – 7 день, оставляя «пеньки» длиной 5-6 мм. При неправильном лечении развивается нагноительная форма микроспории, поверхность кожи покрывается нарывами, при надавливании на которые снаружи появляется гной.

Диагностика:

Методы, применяемые для диагностики микроспории, это люминесцентное, микроскопическое и культуральное исследования.

Люминесцентный метод основан на том, что волосы, пораженные грибком микроспорум, демонстрируют изумрудно-зеленое свечение при попадании под лампу Вуда (лампа, излучающая в «мягком» ультрафиолетовом диапазоне). Исследование под лампой Вуда позволяет оценить масштаб поражения грибком, в дальнейшем служит для корректировки терапии, определяя ее эффективность.

Для микроскопического исследования берутся чешуйки волос из очагов поражения, а при микроспории волосистой части головы – обломки волос. Под микроскопом видны нити мицелия, споры на поверхности волоса, нарушения его структуры.

Культуральное исследование заключается в посеве гриба в питательную среду и служит для точного определения возбудителя. В качестве материала для посева также используются чешуйки или обломки волос. Результаты появляются обычно на третий день после посева.

Меры профилактики:

1. Дети, заболевшие микроспорией, не должны посещать школы и детские сады до своего полного выздоровления.

2. Необходимо соблюдать санитарно-гигиенические правила, то есть пользоваться только индивидуальными головными уборами, одеждой, иметь отдельную постель, полотенце, расческу, мочалку и другие предметы личного пользования.

3. Нельзя разрешать детям общаться с беспризорными животными. Взятых в дом котят или щенков следует показать ветеринарному врачу. Не разрешайте детям брать животных в постель.

4. В случае соприкосновения  с больным животным необходимо помыть руки с мылом, царапины и ссадины смазать 5% йодом, сменить одежду, снятые вещи прокипятить или прогладить горячим утюгом.

5. Домашних кошек и собак по мере надобности мойте с мылом, не допускайте у них блох и обязательно, хотя бы один раз  в год, показывайте ветеринарному врачу.

6. При появлении на коже или голове шелушащихся пятен или очагов нужно немедленно обратиться к  врачу – дерматологу.

ПОМНИТЕ!

Несвоевременное обращение к врачу- дерматологу, самолечение затрудняют диагностику, приводят к распространению высыпаний и переходу заболевания в хроническую форму, что в итоге может привести к необратимому выпадению волос и рассеиванию инфекции в окружающей среде!

Задать вопрос, ГБОУ Школа «Тропарево», Москва

Марина Вячеславовна, добрый день, Добрый день, уважаемая Марина Вячеславовна, Меня зовут Дарья Михайловна Маркина, я мама ученицы 7 класса Вашей школы, и я считаю, нам просто повезло попасть в Вашу школу. Не могли бы Вы уточнить, будут ли предоставлены места для зачисления в 1 класс в будущем учебном году по дополнительному списку для тех, кто не зарегистрирован на прикрепленной территории? Дело в том, что в Вашей школе учится моя старшая дочка, и это замечательно, что мы учимся именно у Вас. Я , безусловно, хочу, чтобы и мой сын (ему сейчас 6, и в следующем году он пойдет в школу) тоже учился именно в этой школе. Он умненький и любознательный мальчик, и, уверена, он станет хорошим учеником, который не заставит учителей краснеть. Зарегистрированы мы все с рождения на Ленинском проспекте, 52, но живем недалеко от Юго-западной уже давно, и будем жить здесь, не возвращаясь на Ленинский. Работаю я также здесь, в РАНХиГС. Добираться до школы от дома очень удобно, а если идти в школу на Ленинском, то придется долго и неудобно ездить, я даже не смогу это совмещать с работой. Кроме того, я не очень доверяю качеству образования в школах нашего прикрепления, несмотря на их репутацию — у меня есть основания полагать, что она уже давно держится во многом на том, что было, но ушло, и сейчас это просто престиж района и самой школы, основанный на материальном положении семей учеников. Я уже обратилась с этим вопросом о дополнительном списке в Департамент образования г. Москвы, но пока ответа нет, и я очень волнуюсь, поэтому решила написать напрямую Вам. Я помню, мы встречались, когда дочка пришла в Вашу школу, я знаю, что Вы неравнодушный человек, для которого благополучие детей не пустой звук. Я очень надеюсь, что Вы ответите мне и сможете пойти навстречу и дать возможность учиться и сыну в Вашей школе. Уверена, ему дадут прекрасное образование и воспитание в Вашей школе, а, главное, научат думать и учиться, дав отличный старт его образовательной и профессиональной карьере. Заранее благодарю Вас за Ваше внимание и надеюсь на положительный ответ. С уважением, Дарья Михайловна Маркина, Ведущий специалист Факультета международного регионоведения и регионального управления Российско-испанского центра образования и сотрудничества ИГСУ РАНХиГС


Карантин в детском саду по микроспории. Микроспория у детей — возбудитель, проявления на волосистой части головы или коже, лечение и профилактика

Карантин в детском саду по микроспории. Микроспория у детей — возбудитель, проявления на волосистой части головы или коже, лечение и профилактика

Вокруг человека постоянно находится огромное количество микроорганизмов, которые способны вызывать разные патологии. Микроспория у детей или стригущий лишай – патология, поражающая волосистую часть голову или гладкую кожу взрослого или ребенка. Болезнь заразная, поэтому необходимо изолировать человека и начать немедленное лечение. Терапия имеет положительный прогноз при соблюдении правил и схемы приема медикаментов.

Что такое микроспория у детей

Эта патология для широких кругов больше известна, как стригущий лишай. Этот термин стал традиционным названием для целой группы недугов, которые затрагивают кожу и волосистую часть головы. Микроспория кожи поражает волосы, они обламываются и появляются проплешины. Заболевание относится к группе инфекционных грибковых патологий, возбудитель (Микроспориум) проникает в кожные покровы, начинает свое размножение, что и приводит к появлению типичных симптомов.

Пути заражения

Проникновение инфекции происходит при контакте с переносчиком, в его роли может выступать другой человек, предмет, животные, которые уже заражены грибком. Существует несколько разновидностей спор, от этого зависит способ распространения среди людей. Выделяют три основных вида Microsporum в зависимости от основного хозяина:

  • Зоофильные грибки. Главными переносчиками являются кошки, собаки и прочие животные.
  • Антропофильные. Главными переносчиками становятся люди.
  • Геофильные. Главное место обитания – почва, здесь они сохраняют свою жизнеспособность на протяжении нескольких месяцев

Инкубационный период у детей

На длительность этого этапа зависит вид грибка, который вызывал микроскопию. К примеру, геофильные и зоофильные споры развиваются на протяжении 5-14 суток. Если под кожу попали антропофильные формы грибка, то инкубационный период займет больше времени – 4-6 недель. Как правило, заражение происходит от больных животных, поэтому заболевание проявляется у человека после 1-2 недели.

Симптомы

Существует общая клиническая картина для всех видом микроскопии, но существуют и индивидуальные признаки каждого вида заболевания, которые становятся характерными особенностями недуга. К общим симптомам относят следующие проявления:

  1. Пятна красного цвета. Один из первых признаков развития патологии, появляются очаги поражения на коже головы и тела. При локализации на волосистой части головы могут появляться пятна и в области бровей, ресниц. При появлении на гладкой коже обнаружить очаги можно на любой части тела.
  2. Белесые мелкие чешуйки. Через несколько суток пятна становятся с розовым оттенком и бледнеют. Начинают на поверхности образовываться белесые чешуйки, возникает их много. Ошибочно они могут быть приняты на волосистой части головы за перхоть, а на теле за первые признаки псориаза у ребенка.
  3. Сильный зуд. В некоторых случаях очаги шелушения сопровождаются этим симптомом. Когда ребенок чешет голову, то родители сначала думают, что это педикулез. Нередко путаются микроскопию с экземой или другим видом дерматита. Это не обязательный признак, болезнь может протекать и без него.
  4. Рост температуры тела. Наблюдается не у всех больных, но может присутствовать.
  5. Увеличение лимфатических узлов. Этот симптом наблюдается только у некоторых малышей на шее.

Объявление карантин в детском саду. Карантин в ДОУ. Права и обязанности сотрудников сада и родителей.

Карантина боятся все – и мамы с папами, чьи дети ходят в детский садик, и сами его сотрудники. Этой темы старательно избегают как рядовые сотрудники ДОУ, так и его руководство. Поэтому большинство родителей весьма туманно представляют, какие права есть у них, и что должны делать работники садика, если группу закрывают на карантин. Поэтому я предлагаю подробно разобрать этот вопрос, чтобы каждый родитель был информационно подкован по этой теме.

Количество заболевших детей для закрытия группы на карантин

Тут все зависит от самой болезни, которая появилась в группе.
Если это сезонное заболевание (ОРВИ, ОРЗ и т.д.), то карантин объявляют при 20% заболевших из группы.
А если это инфекционное заболевание, которое передается при любом контакте от заболевшего ребенка к здоровому – то карантин объявляют после выявления всего одного больного малыша.

Длительность карантина

Она напрямую связана с конкретным заболеванием. У каждой болезни есть инкубационный период – период от дня заражения (или дня контактирования с уже болеющим) до проявления видимых признаков этой болезни. Продолжительность этого периода и будет являться длительностью карантина.
При ОРВИ, скарлатине, вирусном менингите, кишечных инфекциях устанавливается карантин длительностью в неделю, при менингококковых инфекциях- 10 дней, при ветрянке, свинке, краснухе — 3 недели.

Ответственные лица за объявление карантина и за его соблюдение в ДОУ

Руководство садика в день официального выявления опасной инфекции у ребенка, посещающего подведомственное им ДОУ, разрабатывает внутренний приказ, где указывает необходимость установления карантина в группе. Далее заведующая садом вместе с медицинским сотрудником должны поставить в известность всех родителей, чьи дети посещают ДОУ. Информация о карантине обязательно должна содержать ссылку на приказ.

Посещение садика и общественных мест с детьми во время карантина

Администрация ДОУ вправе запретить посещение вашим ребенком садика в том случае, если в день установления заболевания он группу не посещал. А так же, если от выявленного заболевания делалась вакцинация, а у ребенка этой прививки нет.
В остальных случаях все будет зависеть от решения родителей – водить ли ребенка в группу, где он может заразиться этим заболеванием, или же перестраховаться и подержать ребенка дома.
Что касается общественных мест, например, магазинов, парков, кинотеатров и т.д. — прямого запрета на их посещения здоровым ребенком, в группе которого объявили карантин – нет. Но нужно помнить, что симптомы заболевания появляются не сразу и во время инкубационного периода ваш ребенок может заразить окружающих.

Объединение групп по время карантина – правомерно ли?

Даже если из-за болезни группу посещает мало детей, то объединять с другими группами их не могут. По одной простой причине – если посещаемость снизилось на 20% и более – это должно повлечь за собой официальное установление карантина. Карантин и подразумевает, что во время него дети не должны пересекаться друг с другом, чтобы не распространять заболевание по всему садику.

Правила во время карантина в садике

Если в группе объявляется карантин, то на нее накладываются некоторые ограничения. Все они направлены на то, чтобы не допустить распространение болезни.

Во время карантина группе запрещено:

  • на прогулке гулять вместе с другими группами или на их территории;
  • принимать участие в общесадовских мероприятиях, где подразумевается участие всех групп;
  • проводить вакцинации;

Соблюдение санитарного режима в группах в то же самое время усиливается:

  • уборка с мытьем пола производится за день 2 раза;
  • все помещения группы проветриваются как можно чаще, и кварцуются;
  • игрушки и посуда при мытье обрабатываются дезсредствами.

Выдача больничного листа на все время карантина

Если ваш ребенок не пересекался с носителем заболевания, то вы вправе потребовать перевести его в другую группу на время карантина. Либо взять в поликлинике по месту наблюдения и прописки ребенка больничный лист. И оставаться с ним дома, пережидая опасный момент.

По закону (ФЗ №255 от 29 декабря 2006 года) одному из родителей по его просьбе на время карантина в группе участковый педиатр обязан выдать больничный лист.

Карантин по ветряной оспе в детском саду санпин. Правила карантина по ветрянке

 (или ветряная оспа) — это острое инфекционное заболевание с симптомами, проявляющимися множеством высыпаний на коже в виде папул, заполненных прозрачной жидкостью и высокой температурой тела.

Инфекция передается воздушно-капельным путем и распространяется среди детей в возрасте от 2 до 6 лет. У малышей заболевание протекает в более легкой форме. Через некоторое время после недомогания тело покрывается розовыми пятнышками, которые впоследствии превращаются в папулы с жидкостью. Они сильно чешутся. После высыпания у больного повышается температура до 39°C (подробнее). После исчезновения пузырьков на их месте образуется коричневая корочка.

Ветрянка передается воздушно-капельным путем и распространяется среди детей в возрасте от 2 до 6 лет.

При отсутствии иммунитета к данной инфекции ветрянкой могут заболеть и взрослые. Заболевание у них протекает в тяжелой форме (подробнее). Если иммунитет человека ослаблен, то в большинстве случаев у него наблюдается развитие осложнений.

Так как заражению ветрянкой подвержены дети, то очагами распространения заболевания являются детские сады и школы. При выявлении заболевания специальные мероприятия по дезинфекции в учебных заведениях не проводят. Это связано с нестабильной жизнедеятельностью микроорганизма, вызывающего ветрянку. Во внешней среде вирус, вызывающий инфекцию, быстро разрушается.

В группе детского сада объявляется карантин по ветрянке на инкубационный период с момента выявления последнего заболевшего.

Всем малышам, контактировавшим с больным, разрешается посещать садик. Детям по разным причинам, не посещавшим в это время детское учреждение, предлагается перейти в другую группу или оставаться дома на период карантина.

Когда и как объявляют карантин?

Если в учебном заведении обнаруживают ребенка с симптомами ветрянки, в группу или класс вызывают врача для установления диагноза. В случае положительного результата руководитель учебного заведения издает приказ о введении карантина.

Объявление о карантине по ветрянке в детском саду или школе для информирования родителей вывешивают на дверях учреждения. Больных малышей оставляют дома на период, пока появляются высыпания.

Если в учебном заведении обнаруживают ребенка с симптомами ветрянки, в группу или класс вызывают врача для установления диагноза.

Что делать при вспышке ветрянки в коллективе?

При карантине учреждение продолжает работать. Мероприятия, обеспечивающие защиту коллектива от распространения ветрянки:

  • коллективы, находящиеся на карантине, не допускаются в музыкальный и физкультурный залы, занятия проводят в помещении группы или классной комнате;
  • в здания учебных заведений и на прогулку группы на карантине попадают по запасному входу;
  • в помещениях проводят частое проветривание и влажную уборку;
  • дети из карантинных групп, не болевшие ранее ветрянкой, не принимаются в санаторно-курортные учреждения, на стационарное лечение и другие общественные места, где они могут стать источниками инфекции.

По правилам карантина детей каждый день должна осматривать медицинская сестра. При выявлении больного его изолируют от остальных малышей и вызывают родителей забрать ребенка домой.

Сколько длится?

Продолжительность максимального инкубационного периода вируса ветряной оспы, когда отсутствуют симптомы болезни, составляет 21 день. На такой же срок назначают карантин при ветрянке с даты выявления последнего заболевшего малыша. Если появляется очередной больной, карантин продлевают.

При контакте с больным в домашних условиях здоровому ребенку разрешено посещать детский сад на протяжении 10 дней. С 11 по 21 день включительно его в садик не водят.

СанПиН по ветряной оспе

В санитарных правилах (СанПиН) по ветряной оспе собраны нормативные акты, прописывающие мероприятия по предупреждению распространения инфекции в коллективах детей и взрослых.

В СанПиН прописано, что при появлении очага заболевания в детском коллективе не обязательно вводить карантин. К больному ребенку применяются общие для всех инфекционных заболеваний рекомендации:

  • заболевший не может посещать дошкольное учреждение около 3 недель;
  • обязательный визит врача;
  • предоставление справки о состоянии здоровья после ветрянки в детсад или школу.

— эффективный метод профилактики заболевания. СанПин не требует обязательного проведения вакцинации от ветрянки, прививка ребенку делается только по желанию родителей.

Карантин по орви в детском саду санпин. Постановление Главного государственного санитарного врача РФ от 18 ноября 2013 г. N 63 «Об утверждении санитарно-эпидемиологических правил С. 2.3117-13 «Профилактика гриппа и других острых респираторных вирусных инфекций»

  • Приложение. Санитарно-эпидемиологические правила СП 3.1.2. 3117-13 «Профилактика гриппа и других острых респираторных вирусных инфекций»

Постановление Главного государственного санитарного врача РФ
«Об утверждении санитарно-эпидемиологических правил СП 3.1.2.3117-13 «Профилактика гриппа и других острых респираторных вирусных инфекций»

 

В соответствии сот 30.03.1999 N 52-ФЗ «О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения» (Собрание законодательства Российской Федерации, 1999, N 14, ст. 1650; 2002, N 1 (ч. 1), ст. 2; 2003, N 2, ст. 167; N 27 (ч. 1), ст. 2700; 2004, N 35, ст. 3607; 2005, N 19, ст. 1752; 2006, N 1, ст. 10; N 52 (ч. 1), ст. 5498; 2007 N 1 (ч. 1), ст. 21, ст. 29; N 27, ст. 3213; N 46, ст. 5554; N 49, ст. 6070; 2008, N 24, ст. 2801; N 29 (ч. 1), ст. 3418; N 30 (ч. 2), ст. 3616; N 44, ст. 4984; N 52 (ч. 1), ст. 6223; 2009, N 1, ст. 17; 2010, N 40 ст. 4969; 2011, N 1, ст. 6; N 30 (ч. 1), ст. 4563, ст. 4590, ст. 4591, ст. 4596; N 50, ст. 7359; 2012, N 24, ст. 3069; N 26, ст. 3446; 2013, N 27, ст. 3477; N 30 (ч. 1), ст. 4079; N 48, ст. 6165 иПравительства Российской Федерации от 24.07.2000 N 554 «Об утверждении Положения о государственной санитарно-эпидемиологической службе Российской Федерации и Положения о государственном санитарно-эпидемиологическом нормировании» (Собрание законодательства Российской Федерации, 2000, N 31, ст. 3295; 2004, N 8, ст. 663; N 47, ст. 4666; 2005, N 39, ст. 3953) постановляю:

1. Утвердить санитарно-эпидемиологические правила СП 3.1.2.3117-13 «Профилактика гриппа и других острых респираторных вирусных инфекций» ().

2. Признать утратившими силу постановление Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 30 апреля 2003 года N 82 «О введении в действие санитарно-эпидемиологических правил СП 3.1.2.1319-03» («Профилактика гриппа»), зарегистрировано Министерством юстиции Российской Федерации 20 мая 2003 года, регистрационный N 4578 и постановление Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 10 июня 2003 года N 140 «О введении в действие санитарно-эпидемиологических правил СП 3.1.2.1382-03» («Дополнения и изменения в СП 3.1.2.1319-03 «Профилактика гриппа»), зарегистрировано Министерством юстиции Российской Федерации 19 июня 2003 года, регистрационный N 4728.

 

 

Зарегистрировано в Минюсте РФ 4 апреля 2014 г.

Карантин в школе. В школах объяснили, что карантин не каникулы: организуют дистанционное обучение

После известия о закрытии московских школ на карантин с 21 марта по 12 апреля, все родители задались резонным вопросом, как они будут жить дальше. Взрослых интересует, будет ли организовано полноценное дистанционное обучение или проходить школьную программу с ребенком придется самостоятельно. Также работающих мам, которые не могут осуществлять свою деятельность удаленно, крайне волнует вопрос, с кем оставлять младшеклассников в отсутствии бабушек и нянь. Ну и, конечно, все мамы и папы сейчас задумались, чем разнообразить досуг ребенка в отсутствии школы, кружков и дополнительных занятий.

В одном из учебных заведений нам пояснили, что карантин — это не каникулы, дети будут обучаться дистанционно: «В нашей школе дети учатся по модульной системе, соответственно, с 21 марта по 3 апреля они будут заниматься из дома по дистанционной программе, а затем с 6 по 12 апреля уйдут на каникулы. Те учебные заведения, где четвертная система обучения наоборот сначала проведут недельные каникулы, а затем начнут заниматься дистанционно. Сейчас в условиях свободного посещение учителя уже начали удаленно заниматься с отсутствующими учениками. К 21 марта эта система будет полностью отлажена, всем ученикам будут рассылаться задания, а они будут отправлять сделанные материалы учителю. Конечно, младшеклассникам в технических вопросах понадобиться некоторая помощь взрослых. Для работающих родителей учеников начальной школы, которым не с кем оставить ребенка, в школах будут организованы дежурные группы численностью до 12 человек, работающие по принципу продленки только с самого утра. Единственно, организация питания в учебных заведениях будет приостановлена, поэтому данный вопрос родителям придется решать самостоятельно. Все школьные кружки и секции на период карантина, естественно, будут закрыты. Помимо непосредственной организации учебы многих родителей волнует вопрос, как удержать активного ребенка или сразу нескольких детей в четырех стенах три недели, а возможно и дольше.

— Мы скорее всего будем переезжать на дачу, конечно, еще холодновато, но в доме есть печка, не замерзнем, — говорит Наталья, мама третьеклассника. — Мужа перевели на удаленную работу, интернет у нас за городом есть, так что сможем трудиться и учиться спокойно. Можно будет и погулять, все-таки собственный участок не сравнишь даже с большой квартирой. С учебой у нас проблем не будет, сын очень самостоятельный и вполне сможет учиться дистанционно. С репетиторами по английскому и французскому он занимается по скайпу, так что тут тоже вопросов не возникнет. Единственно, непонятно, как быть с тренировками по футболу. Очевидно, придется больше заниматься упражнениями с мягким мячом дома, чтобы не потерять форму. С прогулками тоже проблем не возникнет, мы живем рядом с лесным массивом, где можно погулять , не сталкиваясь вплотную с другими людьми, — рассказала мама пятиклассника.

Больше всего объявление карантина в школах, естественно, взволновало работающих родителей, которым не с кем оставить дома младшеклассника. — Мы с мужем работаем медиками, на удаленку нас точно не переведут, — рассказывает Лариса из Новой Москвы. — Сын учится во 2 классе, оставить его дома одного на целый день пока проблематично. Так что первое время будем отправлять его в дежурную группу в школу, там будет мало детей и жесткие санитарные нормы, так что вероятность заражения минимальна. Если ситуация совсем ухудшится, очевидно, мне придется брать отпуск.

Микроспория. ГУО «Ясли-сад № 80 г. Гродно»

Памятка по микроспории
 
Микроспория (Microsporosis, стригущий лишай) — это грибковая болезнь, характеризующаяся поражением кожи и ее производных.
Источником возбудителя инфекции являются больные животные. Особую опасность в распространении возбудителя и поддержании эпизоотического очага представляют бездомные кошки и собаки. Они нередко также являются источником возбудителя инфекции для человека, особенно для детей. Больные животные загрязняют окружающую среду отпадающими инфицированными чешуйками, корочками, волосами.
Человек заражается при попадании на его кожу загрязненных возбудителем чешуек кожи волос, шерсти. Возможна передача возбудителя через головные уборы, постельные принадлежности, парикмахерские инструменты, предметы обихода.
Микроспория распространена повсеместно. Заболеваемость преобладает в городских поселениях. Заболевают преимущественно дети. Неудовлетворительные гигиенические условия, обилие бездомных животных, а также высокая температура и влажность воздуха способствуют распространению микроспории. Отмечается рост заболеваемости в осенне-зимний период.
Продолжительность инкубационного периода 5-7 дней при зоонозной микроспории, 4 — 6 недель — при антропонозной.
На коже человека появляются округлые и овальные, четко очерченные пятна с отрубевидным шелушением. На волосистой части головы возникает очаг, в котором волосы обломаны на высоте 5 — 6 мм, пеньки волос покрыты чехлом из спор гриба. Поражаются также брови и ресницы.
ПРИ ОБНАРУЖЕНИИ СТРИГУЩЕГО ЛИШАЯ (ТРИХОФИТИИ, МИКРОСПОРИИ)
Срочно обратитесь к врачу! Пройдите полный курс антигрибковой терапии с Вашей максимальной заинтересованностью к выздоровлению с первого раза!
Если стригущим лишаем заболело домашнее животное (лишай у кошек, собак и др.) – постарайтесь его изолировать в отдельном помещении и провести полную дезинфекцию спор в тех помещениях, которые были ему доступны.
При обнаружении и лечении стригущего лишая проведите уборку помещения пылесосом с дальнейшей антигрибковой обработкой и дезинфекцией всех поверхностей, которые могли впитать пораженные отмершие чешуйки кожи больного (в отмерших клетках успешно обитают споры трихофитии и микроспории). Проведите дезинфекцию всех поверхностей!
Профилактика лишая у детей
Факторами, позволяющими предотвратить заражение лишаем, служат: полная изоляция больного ребенка от здоровых детей; ограничение контактов детей с бездомными животными; регулярный осмотр домашних питомцев ветеринаром. Крайне важно уделять внимание укреплению иммунитета детей, прививать детям гигиенические навыки.
Лечение лишая у детей — долгий и требующий терпения процесс. Зачастую исчезновение видимых проявлений вовсе не означает полного выздоровления, поэтому необходимо строго выдерживать обозначенные врачом сроки терапии и карантина.

Pleistophora hyphessobryconis (Microsporidia), заражающая рыбок данио рерио (Danio rerio) в исследовательских учреждениях. Здесь мы описываем инфекции

Pleistophora hyphessobryconis (Microsporidia) у рыбок данио из трех лабораторий. Как и у других аквариумных рыб, у пораженных рыбок данио наблюдались массивные инфекции скелетных мышц без вовлечения гладкой или сердечной мышцы.Кроме того, многочисленные споры внутри макрофагов наблюдались во внутренних органах, включая яичники. Исследования передачи и сравнение последовательностей генов рибосомной РНК (рРНК) подтвердили, что паразитом рыбки данио был P. hyphessobryconis , как описано у неоновой тетра Paracheirodon innesi. Десять 15-дневных рыбок данио подверглись воздействию штаммов P. hyphessobryconis , полученных от одной зараженной неоновой тетра, и 7 из 10 рыбок заразились. Сравнение последовательности гена рРНК малой субъединицы P. hyphessobryconis неоновой тетра с последовательностью, полученной у рыбок данио, было почти идентичным, с разницей <1%.Учитывая серьезность инфекций, P. hyphessobryconis следует добавить в список патогенов, которых следует избегать в исследовательских учреждениях для рыбок данио, и было бы благоразумно не смешивать рыбок данио, используемых в исследованиях, с другими аквариумными рыбками.

Введение

Рыбка данио, Danio rerio, является важной исследовательской моделью для изучения инфекционных заболеваний (Dooley & Zon 2000), биологии развития и генетической биологии (Grunwald & Eisen 1999, Ackermann 2003), рака (Amatruda et al. 2002 г.), иммунологии (Йодер и др., 2002 г., Треде и др., 2004 г.), токсикологии (Хилл и др., 2005 г.) и открытии новых лекарств (Зон и Петерсон, 2005 г.).Их небольшой размер, относительная простота содержания, большое исследовательское сообщество и разработка ex vivo прозрачных эмбрионов делают их подходящей моделью для таких исследований. В результате были созданы многочисленные лабораторные колонии, содержащие штаммы дикого типа, мутантные и трансгенные штаммы с широким разнообразием генетического фона.

К сожалению, как и в случае с любой животной моделью, рыбки данио могут страдать рядом заболеваний, что может исказить результаты экспериментов и вызвать растущую обеспокоенность исследователей.Наиболее распространенными инфекционными заболеваниями, обнаруженными у рыбок данио в лабораторных условиях, являются микобактериоз (Kent et al 2004) и микроспоридиоз, вызываемый микроспоридиями, Pseudoloma neurophilia. Как следует из названия, микроспоридии заражают нервную ткань головного и спинного мозга рыбок данио (Matthews et al 2001).

Недавно мы обнаружили еще один микроспоридий у рыбок данио: Pleistophora hyphessobryconis. Это возбудитель болезни неоновой тетра, поражающей скелетные мышцы многих аквариумных рыб.Основным и типовым хозяином является неоновая тетра Paracheirodon innesi (Characiformes: Characidae). Тем не менее, этот микроспоридий демонстрирует широкую специфичность в отношении хозяина и был обнаружен у многих видов аквариумных рыб из нескольких семейств (Characidae, Cyprinidae, Cyprinodontidae, Poecilidae, Cichlidae), включая D. rerio и D. nigrofasciatus (Steffens 1962). Некоторые сообщения о диапазоне хозяев этого паразита были получены в результате исследований перекрестной передачи (Canning et al 1986), но большинство сообщений о диапазоне хозяев были получены в результате наблюдений за естественным образом зараженными рыбами.Следовательно, возможно, что некоторые из этих инфекций могли быть вызваны другими родственными, неописанными видами, которые морфологически неразличимы.

Мы обнаружили тяжелые мышечные инфекции P hyphessobryconis (Lom & Dyková 1992, Shaw & Kent 1999) у рыбок данио в трех отдельных исследовательских учреждениях. Мы сообщаем здесь об истории болезни, включая макроскопические и гистологические изменения, связанные с инфекцией у лабораторных рыбок данио. Мы показываем, что паразит, недавно обнаруженный у рыбок данио в исследовательских учреждениях, представлял собой P.hyphessobryconis путем проведения экспериментов по перекрестной передаче и сравнения последовательностей генов рРНК с P. hyphessobryconis , полученным от типового хозяина, neon tetra.

Материалы и методы

Истории болезней

Рыбки данио из трех научно-исследовательских учреждений были исследованы гистологически либо в рамках обычного медицинского осмотра, либо потому, что у рыбы проявлялись клинические проявления заболевания. Индексный случай (в лаборатории 1) был оценен двумя из нас (Д. Н. и Дж. Б.), а образцы из двух других учреждений были отправлены в диагностическую службу Международного ресурсного центра данио (http://zebrafish.org/zirc/health/index.phpвеб-сайт). Информация о рыбоводстве и карантинных процедурах была предоставлена ​​заказчиком.

Гистология

Рыбу консервировали либо в 10% забуференном формалине (лаборатория 1), либо в фиксаторе Дитриха (лаборатории 2 и 3) и обрабатывали для обычной гистологии. Рыбам из лаб. 1 были сделаны поперечные срезы; Из рыб лабораторий 2 и 3 готовили сагиттальные срезы. Все срезы окрашивали гематоксилином и эозином. Дополнительные срезы тканей одной инфицированной рыбы из лаборатории 1 окрашивали по Граму Лилли-Творта (Culling 1974), а срезы нескольких инфицированных рыб из лаборатории 3 также окрашивали Accustain (Sigma-Aldrich, St.Сент-Луис, штат Миссури, США), коммерческий краситель Брауна-Хоппса.

Секвенирование гена рРНК

После гистологической диагностики инфекции у нескольких рыб из лаборатории 3 была проведена эвтаназия дополнительных живых рыб и исследованы скелетные мышцы с помощью влажного препарата. Зараженные мышечные ткани трех рыб обрабатывали для секвенирования. Приблизительно 25 мг мышечной ткани экстрагировали с использованием набора QIAgen Blood and Tissue Kit (QIAgen, Валенсия, Калифорния) в соответствии с протоколом производителя для экстракции из ткани с первоначальным расщеплением протеиназой К при 56°C в течение 3 часов.Приблизительно 50 молодых неоновых тетр с подозрением на инфекцию в анамнезе были получены из частного розничного рыбного магазина в Корваллисе, штат Орегон. Мышечная ткань одной зараженной рыбы была заморожена и обработана для секвенирования, как указано выше.

ПЦР проводили с использованием общих праймеров гена рРНК малых субъединиц микроспоридий V1F (5′-CACCAGGTTGATTCTGCCTGAC-3′) и 1492R (5′-GTTACCTTGTTACGACTT-3′). Амплификацию проводили на термоциклере Peltier 200 (MJ Research, Watertown, MA, USA) с начальной денатурацией при 94°С в течение 2 мин, 35 циклов при 94°С в течение 1 мин, 55°С в течение 1 мин и 68°С. С в течение 1 мин с окончательным удлинением при 68°С в течение 7 мин.Продукты ПЦР клонировали в векторы клонирования TOPO TA (Invitrogen, Карлсбад, Калифорния, США) и секвенировали в обоих направлениях с использованием праймеров, фланкирующих вставленную последовательность. Чтобы исключить сопутствующую инфекцию Pseudoloma neurophilia , был разработан обратный праймер с использованием программы Primer-BLAST, доступной онлайн в NCBI (http://www3.ncbi.nlm.nih.gov/). Новый праймер PleistR (5′-TCTCGCTTGTTTCGCGCCTGA-3′) использовали с прямым праймером V1F для проведения ПЦР на образцах из лаборатории 3 с использованием тех же условий термоциклирования, которые описаны выше.Продукты ПЦР из этих образцов были непосредственно секвенированы. Вся ДНК, проанализированная в ходе исследования, была секвенирована на генетическом анализаторе ABI Prism®3730 с набором BigDye® Terminator v. 3.1 Cycle Sequencing kit (Applied Biosystems, Фостер-Сити, Калифорния).

Филогенетический анализ

Последовательность гена 16S рРНК P. hyphessobryconis была сопоставлена ​​с несколькими последовательностями Pleistophora и других близкородственных родов, полученными с помощью запроса BLAST к базе данных GenBank (Altschul 1990) с использованием программного обеспечения Clustalw2 (Larkin et al. 2007).В качестве видов внешней группы были выбраны Pseudoloma neurophilia и Glugea anomala (Microsporidia). Программное обеспечение jModelTest (Posada & Buckley 2004) использовалось для определения наиболее вероятной модели эволюции последовательности для набора данных, а филогенетический анализ выполнялся с использованием байесовского вывода, реализованного в MrBayes3.1.2 (Huelsenbeck et al 2001), и алгоритмов максимального правдоподобия (Guindon et al. al 2009), реализованный на веб-сервере PHYML (http://www.atgc-montpellier.fr/phyml/).MrBayes запускали с использованием модели нуклеотидных замен General Time Reversible (GTR) с вариациями скорости γ-распределения по сайтам и пропорцией неизменных сайтов (GTR+G+I) для 1 000 000 поколений. PHYML запускали с использованием модели замены нуклеотидов GTR, а поддержка начальной загрузки основывалась на 100 повторах.

Следующие последовательности были получены из GenBank и использованы для выравнивания и последующего филогенетического анализа: Pleistophora ovariae ({«type»:»entrez-нуклеотид»,»attrs»:{«text»:»AJ252955.1″,»term_id»:»7161930″,»term_text»:»AJ252955.1″}}AJ252955.1), P. mirandellae ({«type»:»entrez-нуклеотид»,»attrs»:{» text»:»AJ252954.1″,»term_id»:»7161929″,»term_text»:»AJ252954.1″}}AJ252954.1), Ovipleistophora mirandellae ({«type»:»entrez-нуклеотид»,» attrs»:{«text»:»AF356223.1″,»term_id»:»13876945″,»term_text»:»AF356223.1″}}AF356223.1), Heterosporis anguillarum ({«type»:»entrez -нуклеотид»,»attrs»:{«текст»:»AF387331.1″,»term_id»:»27448231″,»term_text»:»AF387331.1″}}AF387331.1), P. mulleri ({«type»:»entrez-нуклеотид»,»attrs»:{«текст»:»AJ438985.1″,»term_id»:»21668450″,» term_text»:»AJ438985.1″}}AJ438985.1), P. hippoglossoideos ({«type»:»entrez-нуклеотид»,»attrs»:{«текст»:»AJ252953.1″,»term_id» :»7161928″,»term_text»:»AJ252953.1″}}AJ252953.1), Pleistophora sp.({«type»:»entrez-нуклеотид»,»attrs»:{«text»:»AJ252957. 1″,»term_id»:»7161932″,»term_text»:»AJ252957.1″}}AJ252957.1), P. типичный ({«type»:»entrez-нуклеотид»,»attrs»:{» текст»:»AJ252956.1″,»term_id»:»7161931″,»term_text»:»AJ252956.1″}}AJ252956.1), P. anguillarum ({«type»:»entrez-нуклеотид»,»attrs»:{» text»:»U47052.1″,»term_id»:»1197556″,»term_text»:»U47052.1″}}U47052.1), Pleistophora sp. 2 ({«type»:»entrez-нуклеотид» ,»attrs»:{«text»:»AF044389.1″,»term_id»:»4249362″,»term_text»:»AF044389.1″}}AF044389.1), Trachipleistophora ({«type»:» entrez-нуклеотид»,»attrs»:{«текст»:»AJ002605.1″,»term_id»:»2644955″,»term_text»:»AJ002605.1″}}AJ002605.1), Vavraia culicis ({ «type»:»entrez-нуклеотид»,»attrs»:{«текст»:»AJ252961.1″,»term_id»:»7162181″,»term_text»:»AJ252961.1″}}AJ252961.1), Pleistophora sp. 3 ({«type»:»entrez-нуклеотид»,»attrs»:{ «text»:»AF044390.1″,»term_id»:»4249361″,»term_text»:»AF044390.1″}}AF044390.1), G. аномала ({«type»:»entrez-нуклеотид» ,»attrs»:{«text»:»AF056016.1″,»term_id»:»3065735″,»term_text»:»AF056016.1″}}AF056016.1), G. stephani ({«type» :»entrez-нуклеотид»,»attrs»:{«текст»:»AF056015.1″,»term_id»:»3065734″,»term_text»:»AF056015.1″}}AF056015.1), г.atherinae ({«type»:»entrez-нуклеотид»,»attrs»:{«текст»:»U15987.1″,»term_id»:»562115″,»term_text»:»U15987.1″}}U15987. 1), Loma acerinae ({«type»:»entrez-нуклеотид»,»attrs»:{«текст»:»AJ252951.1″,»term_id»:»7161819″,»term_text»:»AJ252951.1 «}}AJ252951.1), Pleistophora sp. 1 ({«type»:»entrez-нуклеотид»,»attrs»:{«текст»:»AF044394.1″,»term_id»:»3033524″,»term_text»:»AF044394.1″}}AF044394.1 ) и Pseudoloma neurophilia ({«type»:»entrez-нуклеотид»,»attrs»:{«текст»:»AF322654.1″,»term_id»:»11993647″,»term_text»:»AF322654.1″}}AF322654.1).

Исследования передачи

Все рыбы содержались и обращались с ними гуманно, и протокол исследования был проведен с одобрения

Две группы 15-дневных рыбок данио AB (10 рыб на группу) были получены из Лаборатории водных исследований Синнхубер Университета штата Орегон, и каждая группа была помещают в резервуар объемом 1,5 л. Подсчет спор проводят с помощью гемоцитометра.В резервуар одной группы добавляли гомогенизированную мышечную ткань, содержащую 50 000 спор сильно зараженной неоновой тетра. Другая группа была проведена в качестве необлученного контроля. Резервуары оставались неподвижными в течение 12 часов после воздействия, после чего медленно подавался поток воды. Рыб содержали в проточной системе, подаваемой приблизительно 100 мл в час дехлорированной водопроводной воды, нагретой до 28°C, и кормили диетой Zeigler® Larval Diet (Zeigler, Gardners, PA, USA) два раза в день. Через 30 дней всех рыб подвергали эвтаназии передозировкой метансульфата трикаина (MS-222) и подвергали гистологии.Кроме того, две умирающие рыбы из группы, подвергшейся воздействию паразита, были собраны через 20 дней после воздействия и исследованы с помощью влажного препарата.

Результаты

История болезни: Лаборатория 1

Рыбки данио в этом учреждении содержались как закрытая колония в течение нескольких лет. Чтобы добавить генетического разнообразия в эту колонию, в июне 2006 года группа из примерно 400 взрослых рыбок данио была куплена у коммерческого оптового поставщика, который в основном снабжает зоомагазины различными видами тропических рыб.Новые рыбы содержались в карантине в течение 90 дней, и за это время не было отмечено никаких проблем с болезнями. Находясь в карантине, новая рыба была отделена от другой рыбы в круглом аквариуме объемом 85 галлонов с непрерывным потоком свежей, необработанной воды. Источник воды был тот же, что и для созданной исследовательской колонии: смесь воды из муниципального хозяйства, прошедшей фильтрацию обратного осмоса, и воды из глубокого местного колодца. Рыбам давали тот же корм, что и взрослым рыбам в созданной колонии, состоящий из сухого хлопьевидного корма (хлопьевидный корм для тропических рыб TetraMin) два раза в день и живых артемий один раз в день.По окончании карантинного периода , самка из недавно купленной группы была скрещена с самцом из давно сложившейся колонии. Яйца/развивающиеся эмбрионы дезинфицировали отбеливателем путем погружения в водяную баню, содержащую 30 ppm гипохлорита натрия, на 2 минуты, после чего эмбрионы переносили в 10-галлонные аквариумы, где они развивались в мальков. Все эти аквариумы использовали одну и ту же систему рециркуляции воды. Корм, который давали малькам, состоял из живых Tetrahymena на 1–4-й день после вылупления, живых микрочервей на 3–21-й день и живых артемий на 6–21-й день.После 21-го дня рыб кормили хлопьями и артемией, как описано выше для взрослых рыбок данио. Все живые беспозвоночные, скармливаемые рыбе, были получены из культур, содержащихся в лаборатории 1.

В возрасте примерно 1 месяца молодь рыбы была переведена из 10-галлонных аквариумов в одиночный 85-галлонный круглый аквариум с непрерывным протоком пресная, необработанная вода. В октябре 2007 года (т. е. в возрасте 13 месяцев) восемь внешне здоровых рыб из этой группы были случайным образом отобраны для плановой оценки состояния здоровья, и при гистологическом исследовании одна из этих рыб была признана зараженной микроспоридиями, морфологически соответствующими P.гифесобриконис. В течение нескольких недель после обнаружения зараженной рыбы оставшиеся 135 рыб из этой родственной когорты были подвергнуты эвтаназии и исследованы макроскопически (98 рыб) и/или гистологически (37 рыб). Других зараженных рыб в этой группе выявлено не было, и в лаборатории 1 не было выявлено никаких последующих случаев. в диагностическую лабораторию Международного ресурсного центра Zebrafish (ZIRC), Орегонский университет, Юджин, штат Орегон.Рыба была штаммом дикого типа, купленным у коммерческого продавца тропической рыбы, и в то время, когда она заболела, она находилась на карантине. Рыба была вылуплена в сентябре 2008 г. и отправлена ​​в диагностическую лабораторию в марте 2009 г.

История болезни Лаборатория 3

Инфекция была первоначально обнаружена у 2 из 13 умирающих рыб, переданных в диагностическую службу ZIRC в июне 2009 г. Зараженных животных было 18. — месячные рыбы из штамма CG1: клональная гомозиготная линия рыб, используемая исключительно для исследований по трансплантации тканей и полученная с использованием рыб AB, полученных из лабораторной колонии, и мутантной линии латуни , полученной из зоомагазина (Mizgireuv & Revskoy 2006). ).

Рыба-основатель CG1 в Лаборатории 3 (т. е. бабушка и дедушка зараженной рыбы) была первоначально импортирована из другого учреждения в карантинный центр Лаборатории 3 в виде икры с продезинфицированной поверхностью. Этот карантинный объект физически отделен от основного помещения для содержания рыбы, с изолированными системами оборотного водоснабжения, ультрафиолетовой обработкой сточных вод после фильтрации, ограниченным доступом и специальным оборудованием. Рыбу перемещают из карантина в основное помещение в виде икры после дезинфекции гипохлоритом натрия с концентрацией 30 ppm в течение 2 мин и переноса в стерильную воду.

После этого открытия другие рыбы в этом учреждении были проверены на наличие паразита. Во-первых, 10 живых рыб из того же стада, у которого была обнаружена первоначальная инфекция, были отправлены живыми в Университет штата Орегон для гистологии. Все эти животные, многие из которых имели явные клинические признаки инфекции, гистологически дали положительный результат на паразита. Еще 13 человек из последующего (F3) поколения CG1 в этом учреждении были обследованы и подтверждены гистологически как положительные на инфекцию.Наконец, в августе 2009 г. инфекции были обнаружены еще у трех рыб, еще у двух из поколения F3 штамма CG1 и еще у одной рыбы из отдельной популяции рыбок данио штамма WIK. Все трое этих животных были подвергнуты сублетальным дозам гамма-излучения для подавления иммунной системы перед трансплантацией тканей (Traver et al 2004). Рыба WIK на этом объекте была импортирована, как описано для линии CGI, и содержалась внутри в течение многих поколений, при этом не было известно истории контакта с рыбой за пределами колонии.

В октябре 2009 г. 46 рыб штамма AB из лаборатории 3 были отправлены в ZIRC для гистологического анализа в рамках программы дозорного мониторинга здоровья головного учреждения. Эти рыбы были импортированы непосредственно на предприятие из ZIRC в виде икры, продезинфицированной на поверхности, и выращивались небольшими группами в каждой из систем рециркуляции предприятия. Через 6 месяцев все эти рыбы были подвергнуты эвтаназии и исследованы гистологически. Одна рыба из этой группы дала положительный результат на P. hyphessobryconis , и ее поместили в ту же стеллаж, что и инфицированную рыбу CG1.

Макроскопические изменения и клинические признаки

У одной зараженной рыбы из Лаборатории 1 не было выявлено явных клинических или макроскопических изменений. Одна зараженная рыба из Лаборатории 2 была вялой, выглядела вздутой и имела белый участок кожного покрова ниже спинного плавника, который был очевиден у плавающих рыб при осмотре сверху.

В Лаборатории 3 у инфицированных рыб во время плавания в аквариумах наблюдались большие депигментированные области в области центрального спинного плавника. У некоторых рыб также наблюдались искривления позвоночника.При осмотре зараженной рыбы с помощью препаровального микроскопа были обнаружены мультифокальные или сливающиеся бело-серые, слегка приподнятые участки кожи с депигментацией. Удаление кожи показало, что нижележащие скелетные мышцы были белыми, мягкими и отечными (). Одна положительная рыба AB из контрольной группы Лаборатории 3 выглядела нормальной после эвтаназии.

Рыбки данио, инфицированные P. hyphessobryconis. Верхнее изображение имеет пятнистый вид со светлыми участками (стрелки) по бокам. На нижнем изображении та же рыба с удаленной кожей, на которой видны непрозрачные участки мышц (стрелки), указывающие на массивную инфекцию.Бар = 500 мкм.

Микроскопические исследования

Влажные препараты скелетных мышц инфицированной рыбы выявили многочисленные спорофорные везикулы, многие из которых содержали полностью развитые споры. Споры во влажных препаратах имели размер 7 мкм на 4 мкм (n = 20) и содержали заметную заднюю вакуоль размером примерно 3 мкм на 3 мкм (). Гистопатологические изменения были одинаковыми во всех трех лабораториях и поэтому описаны вместе. Как ранее было описано другими исследователями (Canning et al 1986, Dyková & Lom 1980, Schäperclaus 1941), внутримышечная инфекция P.hyphessobryconis микроспоридии вызывали нарушение скелетных мышц, состоящих из миомерных единиц. Однако у нескольких рыб, исследованных в рамках этого исследования, тяжесть инфекции была гораздо более выраженной и сопровождалась тяжелым хроническим воспалением. У этих рыб в среднем от 50 до 80% пораженных миофибрилл скелетных мышц демонстрировали обширный разжижающий некроз и заметное расширение за счет внутримышечного микроспоридиального паразита. Среди пораженных мышечных волокон также наблюдалась дегенерация скелетных мышц, выражающаяся в потере поперечной исчерченности, а также в фрагментированных, гиперэозинофильных миофибриллах и централизованных ядрах.На срезах миофибриллы мышц содержали от 2 до 30 с лишним P. hyphessobryconis организмов на разных стадиях развития, от округлых многоядерных меронтов до спорофорных везикул, содержащих материнские клетки споробластов, и везикул со зрелыми спорами. Миофибриллы пораженных скелетных мышц часто были окружены большим количеством смешанных гистиоцитов и лимфоцитов с меньшим количеством эозинофильных зернистых клеток, которые располагались вдоль эндомизиальной соединительной ткани и сопровождались выраженным эндомизиальным отеком, широко разделявшим миофибриллы.Регенерирующие миофибриллы, характеризующиеся усиленной саркоплазматической базофилией и скоплением ядер, часто примыкали ко многим некротическим миофибриллам (данные не показаны). Многочисленные высвободившиеся зрелые споры в эндомизиальных пространствах были окружены плотными скоплениями гистиоцитов и лимфоцитов. Иногда внутри активированных гистиоцитов обнаруживались фагоцитированные зрелые споры.

Влажный препарат из спор P. hyphessobryconis . Обратите внимание на видную заднюю вакуоль (стрелка). Бар = 10 мкм.

Гистологические срезы рыбок данио, инфицированных P. hyphessobryconis . A. Многочисленные спорофорные везикулы со спорами и стадиями развития внутри миоцитов. Гематоксилин и эозин (H&E). Бар = 20 мкм B. Споры в фагоцитах, связанные с хроническими инфекциями и миолизом (обозначены стрелками). ОН. Бар = 20 мкм. C. Смешанная инфекция с P. hyphessobryconis в мышцах и ксеномами Pseudoloma neurophilia в спинном мозге (стрелки).Аккустен Грэм. Бар = 20 мкм. D. Меронты (m), а также развивающиеся и зрелые споры (sp) в спорофорных пузырьках. Некоторые полностью развитые споры окрашиваются в темно-синий цвет (стрелки). Аккустен Грэм. Бар = 10 мкм. E. Зрелые споры окрашиваются от темно-синего до пурпурного (стрелки), стадии развития светло-оранжевые (острия стрелок). Лилли Туорт Грэм. Бар = 10 мкм. F. Многочисленные споры (стрелки) во всех слоях кишечника и брыжейки. Аккустен Грэм. Бар = 20 мкм.

Г. Массы спор в фагоцитах (стрелки) в яичниках. Аккустен Грэм. Бар = 10 мкм.

Паразитарная инфекция у одной рыбы из лаборатории 1 была ограничена скелетными мышцами; однако у рыб из двух других лабораторий споры внутри фагоцитов были также обнаружены в различных других органах, включая интерстиций почек, селезенку, яичники, кишечник и брыжейку. Массивное количество спор внутри фагоцитов часто наблюдалось в соединительных тканях яичника, но никогда не наблюдалось внутри яйцеклетки.Скопления спор наблюдались во всех слоях кишечника, проникая через серозную поверхность в брыжеечную соединительную ткань. Гладкая и сердечная мышцы не были поражены ни у одной из исследованных рыб. Оба метода окрашивания по Граму были эффективны для различения спор. При использовании метода Accustain зрелые споры окрашивались в темно-синий цвет, в то время как незрелые споры, по-видимому, поглощали меньше красителя. По методу Лилли-Творта полностью сформировавшиеся споры окрашивались от темно-синего до пурпурного ().

У всех семи рыб из Лаборатории 3, прошедших гистологический анализ, обнаружена смешанная инфекция Pseudoloma neurophilia ().Этот микроспоридий легко отличить от P. hyphessobryconis по расположению в центральной нервной системе и отсутствию спорофорного пузырька с выступающей стенкой.

Последовательность рибосомной ДНК

1361 п.н. гена малой субъединицы рРНК была секвенирована из P. hyphessobryconis , полученного из инфицированной неоновой тетра, и доступна в базе данных GenBank под инвентарным номером {«type»:»entrez-нуклеотид», «attrs»:{«текст»:»GU126672″,»term_id»:»264683451″,»term_text»:»GU126672″}}GU126672.Максимальное правдоподобие и байесовский анализ дали филогенетические деревья с идентичной топологией (). Топология также согласуется с другими филогенетическими анализами микроспоридий рыб (Moran et al 1999). P. hyphessobryconis был помещен в кладу, содержащую Ovipleistophora ovariae и Ovipleistophora mirandellae , а также Heterosporis anguillarum.

Филогенетическое дерево Pleistophora hyphessobryconis , полученное из неоновой тетра и родственных микроспоридий, основанное на последовательностях генов малых субъединиц рРНК.Для реконструкции филогении использовали последовательности генов малых субъединиц рРНК размером 1361 п.н. из 20 микроспоридий, заражающих рыб. Показано дерево максимального правдоподобия. Номера ветвей представляют собой поддержку начальной загрузки с максимальным правдоподобием, основанную на 100 повторах/байесовских апостериорных вероятностях. Показанные названия родов записаны в GenBank с новыми обозначениями родов в скобках. Микроспоридий паразит Pseudoloma neurophilia был выбран в качестве таксона внешней группы.

Всего 1224 п.н. (положения с 1 по 1224) гена малой субъединицы рРНК было секвенировано из P.hyphessobryconis , полученный от трех рыбок данио, представленных Лабораторией 3. Все три из этих последовательностей были идентичными, без вставок/делеций и переходов/трансверсий. Сравнение подмножества 1224 п.н. последовательности, полученной от неоновой тетра, и трех последовательностей, полученных от рыбок данио, не выявило вставок/делеций и двух переходов: один в сайте 149 (T в C) и в сайте 180 (G в A) для общее парное расстояние 0,002.

Передача

У обоих умирающих рыбок данио, собранных из группы, подвергшейся воздействию инфицированной ткани неоновой тетра, через 20 дней после воздействия наблюдались массивные мышечные инфекции, основанные на наблюдениях во влажных препаратах.Гистологическое исследование оставшейся рыбы, собранной через 30 дней, показало наличие инфекции у пяти из восьми рыб. Эти рыбы имели легкие инфекции на разных стадиях развития.

Обсуждение

Идентификация и таксономия

P. hyphessobryconis Инфекции аквариумных рыб документировались в течение многих десятилетий после первоначального описания в 1941 г. Шеперклаусом (Schäperclaus 1941). Что необычно для микроспоридий, паразит проявляет удивительно широкую специфичность к хозяину, заражая около 20 видов пресноводных рыб четырех отрядов (Lom & Dykova 1992, Schäperclaus 1991, Steffens 1962).Среди них данио (Opitz 1942) и карликовый данио, D. nigrofasciatus (Spence et al 2008). Здесь мы обнаружили инфекцию в трех отдельных исследовательских колониях рыбок данио без каких-либо известных перемещений рыб между объектами. Подтверждение круга хозяев паразитов с ограниченными морфологическими признаками (таких как микроспоридии) часто требует изучения перекрестной передачи или сравнения последовательностей. Имеются сообщения об экспериментальных экспериментах по передаче P. hyphessobryconis среди различных рыб (Canning et al 1986).Здесь мы подтвердили, что инфекция у рыбок данио была P. hyphessobryconis с помощью гистологии, сравнения последовательностей генов рРНК и исследований перекрестной передачи.

Мы обнаружили только <1% (0,002) различия в последовательности гена малой субъединицы рРНК между паразитами типа хозяина (неоновая тетра) и рыбками данио. Это согласуется с внутривидовой изменчивостью в этой области малой субъединицы рРНК для других Pleistophora spp. и связанные с ними микропоридии. Внутривидовое попарное расстояние между другими доступными последовательностями от нескольких особей в GenBank следующее: P.типичный, 0,013; Heterosporis (син. Pleistophora ) anguillarum , 0,02; Ovipleistophora (син, Pleistophora ) mirandellae, 0,069; и P. mulleri ., 0,007. Кроме того, мы обнаружили среднее попарное межвидовое расстояние 0,198 для всех представителей родов Pleistophora , Ovipleistophora и Heterosporis с последовательностями, опубликованными в GenBank. Незначительные, но постоянные различия, наблюдаемые между тремя последовательностями рыбок данио по сравнению с последовательностями неоновой тетры, могут свидетельствовать о разных штаммах паразита.Несмотря на это, паразит неоновой тетры легко передался рыбкам данио. Наши результаты согласуются с предыдущими исследованиями передачи, подтверждая широкую специфичность этого микроспоридия к хозяину (Canning et al 1986).

Ранее было отмечено, что род Pleistophora не образует монофилетическую кладу (Nilsen et al 1998). Фактически, ультраструктурная характеристика и молекулярный анализ последовательностей генов малых субъединиц рРНК привели к перемещению P. mirandellae (Pekkarinen 2002) и P.anguillarum (Lom et al 2000) к новым родам ( Ovipleistophora и Heterosporis соответственно). Предыдущие ультраструктурные описания P. hyphessobryconis (Lom & Corliss 1967) подтверждают отнесение этого вида к роду Pleistophora , повторно описанному Каннингом и Николасом (Canning & Nicholas 1980). Однако филогенетический анализ P. hyphessobryconis ставит его ближе как к Ovipleistophora mirandellae , так и к Heterosporis anguillarum , чем к P.типичный , типовой вид, описанный для рода (). Интересно, что в отличие от представителей Ovipleistophora, этот вид инфицирует не ооциты, а скорее миоциты, как это делает типовой вид этого рода, P. typalis . Всесторонний анализ рода выходит за рамки данного исследования, но, по-видимому, необходимы дальнейшие исследования.

Передача

Эти три предприятия никогда не занимались совместным использованием рыбы и расположены в разных районах Соединенных Штатов.Таким образом, мы предполагаем, что инфекции возникли в трех независимых случаях при контакте с другими видами зараженных аквариумных рыб. Действительно, линия CG1 была получена от рыбок данио, купленных в зоомагазине (Mizgireuv & Revskoy 2006). Пораженная рыба из лаборатории 2 также была куплена в зоомагазине, а материнский родитель зараженной рыбы из лаборатории 1 был куплен у продавца, поставлявшего рыбу в коммерческую торговлю домашними животными. Как указано выше, передача P. hyphessobryconis , якобы per os , была достигнута путем помещения большого количества спор в воду с рыбой, метод, который использовался другими (Canning et al 1986).Как и в случае с другими микроспоридиями, предполагается, что заражение инициируется проглатыванием спор. Споры, выделяемые мертвой рыбой, являются вероятным источником инфекции, но также могут выделяться из кишечника. Schäperclaus (1941) предположил, что споры могут выделяться из кожи или мочевыводящих путей инфицированной рыбы.

Рыбки данио часто нерестятся в аквариумах, и их товарищи по аквариуму быстро поедают икру (Lawrence 2007, Spence et al 2008). Хотя споры не были обнаружены в икре, огромное их количество, наблюдаемое в яичниках некоторых инфицированных рыбок данио, предполагает, что инфекционные споры могут выделяться во время нереста и, таким образом, быть доступными для рыб, питающихся икрой, или для заражения следующего поколения рыб.Материнская передача, включая истинную вертикальную передачу внутри икры, была подтверждена или связана с другими микроспоридиями рыб (Docker et al 1997, Kent & Bishop-Stewart 2003, Phelps & Goodwin 2008). Schäperclaus (1941) предположил возможность материнской передачи, поскольку он обнаружил инфекции у 8-дневных неоновых тетр, полученных от инфицированных родителей. Вполне вероятно, что после заражения у рыбок данио инфекция может передаваться по материнской линии следующему поколению. Это может произойти даже со спорами вне яйца, поскольку споры микроспоридий очень устойчивы к хлору (Ferguson et al 2007).Это дает одно из объяснений возникновения инфекции у рыб, полученных из поверхностно-дезинфицированной икры. Кроме того, эти рыбы могли заразиться в результате неустановленного нарушения протоколов биобезопасности.

Зараженная рыба из Лаборатории 1 была 13-месячным потомством самки рыбы, которая была куплена у стороннего продавца и доставлена ​​в лабораторию. Если бы эта рыба была заражена в эмбриональном периоде, это означало бы, что рыба была заражена субклинически в течение более 1 года.Вся рыба, купленная у продавца, была удалена из лаборатории 1 более чем за 7 месяцев до обнаружения зараженной рыбы. Даже если рыба была заражена не в эмбриональном периоде, а позднее в результате случайного перекрестного заражения зараженной рыбой из группы, купленной у продавца, это указывает на то, что эта рыба была субклинически заражена в течение более 7 месяцев.

Как и в случае других микроспоридиозных инфекций, вполне вероятно, что иммунный статус влияет на восприимчивость рыбок данио к P.Hyphessobryconis . Недавно Ramsay et al. (Ramsay et al. 2009) показали, что стресс усиливает инфицирование P. neurophilia у рыбок данио. Инфекции P. hyphessobryconis были широко распространены только в одном штамме (CG1) в одной из лабораторий, при этом инфекция позволяет предположить, что эта линия может быть особенно восприимчива к паразиту. Микроспоридии также были обнаружены у рыб (CG1 и WIK), подвергшихся облучению и, следовательно, ослабленным иммунитетом. Хотя иммунный статус, вероятно, влияет на восприимчивость и прогрессирование заболевания у рыбок данио, по-видимому, иммунокомпетентные рыбы могут заразиться, о чем свидетельствуют сообщения о P.hyphessobryconis у рыбок данио из аквариумов (Opitz 1942, Steffens 1962) и здесь сообщается об экспериментальных инфекциях у предположительно здоровых рыбок данио. Последние подвергались воздействию в возрасте 15 дней, когда у рыб появляется врожденный иммунитет, но адаптивный иммунитет еще не полностью развит (Lam et al 2004, Trede et al 2004).

Патология

Инфекция у рыбок данио соответствовала сообщениям о неоновых тетрах и других видах (Dyková & Lom 1980, Canning et al 1986, Schäperclaus 1991).Наиболее примечательной патологической особенностью P. hyphessobryconis является сильная интенсивность инфекции в скелетных мышцах, причем у некоторых рыб более половины мышечных волокон содержат многочисленные споры и стадии развития. Паразиты в миоцитах не были связаны с воспалением; однако зрелые споры, высвобождаемые из дегенеративных миофибрилл в интерстициальные пространства, постоянно ассоциировались с воспалением, и эти высвобождающиеся споры часто поглощались фагоцитами. Это похоже на то, что наблюдается с другими внутримышечными паразитами рыб, такими как тирситы Kudoa лосося (Moran et al 1999).Точно так же другие микроспоридии демонстрируют аналогичные последствия инфекции, при которых споры вызывают значительное воспаление только после того, как они высвобождаются из своей внутриклеточной среды внутри ксеном (Dyková & Lom 1980, Kent & Speare 2005). Споры микроспоридий остаются интактными внутри фагоцитов и, таким образом, могут переноситься в места за пределами того места, где они первоначально развились (Kent et al 1999). Ранее наблюдалось появление большого количества спор P. hyphessobryconis в фагоцитах органов, отличных от скелетных мышц, как видно из настоящего исследования (Lom J, Dykova 1992).Споры Microsporidia грамположительны в гистологических срезах (Gardiner et al 1998, Bruno et al 2006). Окрашивание как по Лилли-Творту, так и по Аккустайну по Граму было очень эффективным для выявления спор и особенно полезным для визуализации отдельных спор во внутренних органах.

У некоторых инфицированных рыбок данио обнаруживались сопутствующие инфекции, вызванные Pseudoloma neurophilia , распространенным микроспоридиозным паразитом рыбок данио, который демонстрирует миелинотропное поведение и непосредственно связан с энцефаломиелитом и полиневритом, поражающим периферические нервы и корешки спинномозговых нервов.Две микроспоридии можно легко отличить по гистологии. Скелетная мышца является основным местом развития P. hyphessobryconis , с заметными стадиями развития и спорами внутри толстостенных спорофорных пузырьков. Напротив, центральная и периферическая нервная система являются первичными очагами инфекции для P. neurophilia , и обнаружение отдельных спор или ксеном в экстраневральной ткани встречается редко. В случаях миозита, приписываемого P. neurophilia , в мышцах обнаруживается небольшое количество спор, но они часто связаны с тяжелым хроническим воспалением (Matthews et al 2001).В случае коинфекций непрозрачные депигментированные мышечные поражения явно были вызваны P. hyphessobryconis . Однако возможно, что P. neurophilia способствовали другим клиническим изменениям.

Учитывая возможность тяжелых инфекций и длительных субклинических хронических инфекций, P. hyphessobryconis следует добавить в список патогенов, которых следует избегать в исследовательских учреждениях для данио. Как было предложено для Pseudoloma neurophilia (Kent et al 2009) , , наиболее осуществимой стратегией было бы содержание производителей в карантине и их скрининг и их потомство на наличие инфекции с использованием ПЦР-теста, специфичного для паразита.Программы наблюдения за рыбой и отбор проб умирающей рыбы также рекомендуются в качестве средства наблюдения за здоровьем колонии. Примечательно, что два из этих случаев были связаны с рыбой, которая контактировала с рыбой из коммерческого зоомагазина. Было бы благоразумно не смешивать рыбок данио, используемых в исследованиях, с другими аквариумными рыбками. Необходимы дальнейшие исследования роли материнской передачи, восприимчивости спор к дезинфицирующим средствам, а также роли возраста и штамма рыб в тяжести заболевания.

Ликвидация микроспоридий из карантинных популяций вересковых жуков

%PDF-1.6 % 76 0 объект > эндообъект 2 0 объект > эндообъект 79 0 объект >поток 2009-01-21T09:23:40ZOmniPage 11 http://www.scansoft.com2009-01-21T09:25:57+13:002009-01-21T09:25:57+13:00OmniPage 11 http://www. scansoft.comapplication/pdfuuid:8833a414-2a11-4129-a600-34b839097275uuid:4bf05748-7e44-4e26-90ae-2c2139ee1c83 конечный поток эндообъект 1 0 объект > эндообъект 4 0 объект > эндообъект 15 0 объект > эндообъект 30 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 42 0 объект > эндообъект 53 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 64 0 объект > эндообъект 74 0 объект [] эндообъект 73 0 объект [68 0 Р 70 0 Р] эндообъект 65 0 объект >/Высота 117/Тип/XObject>>поток KgG#4yE#»»»»#*htr#aQy6Gft]GDDDDDDeZ#>_#|mDtcZ! «&R$tBaDDdMH>(DtGN»»ԫ˳0DDDDd.##:0″»»#*

тн.»»»»»»? конечный поток эндообъект 72 0 объект >/Шрифт>/ProcSet 3 0 R>> эндообъект 3 0 объект [/PDF/текст/изображениеB/изображениеC/изображениеI] эндообъект 67 0 объект > эндообъект 68 0 объект >поток конечный поток эндообъект 70 0 объект >поток БТ 0 г /OP11Font0 28 Tf 0 0 0 рг 71 Тз 1 0 0 1 132 767 Тм (6 .) Tj 2000 тз 1 0 0 1 0 841 Тм (\т) Тj 104 ТЗ 1 0 0 1 180 766 Тм (Поздний результат) Tj /OP11Font0 11 Tf 112 ТЗ 1 0 0 1 180 720 Тм (24 июня мы исследовали мазки, взятые у вересковых жуков) Tj 108 ТЗ 1 0 0 1 180 706 Тм (собраны в Шотландии и недавно помещены на карантин в Новой Зеландии.Споры были) Тж 110 Тз 1 0 0 1 180 692 Тм (не обнаружены в остатках жуков, собранных в озерах Лох-Линне и Раннок) Tj 107 ТЗ 1 0 0 1 180 679 Тм (Мор, но были замечены в муке жуков из деревни Гленко.) Tj 111 ТЗ 1 0 0 1 180 651 Тм (Последние результаты показывают, что микроспоридиоз широко распространен). 107 ТЗ 1 0 0 1 180 637 Тм (используется в британских популяциях вересковых жуков. Однако не удалось обнаружить) Tj 110 Тз 1 0 0 1 180 623 Тм (инфекции на двух участках в Шотландии и у жуков из Окворта, Йорк-) Tj 109 ТЗ 1 0 0 1 180 609 Тм (шире) показывает, что можно выделить популяции, в которых дис-) Tj 111 ТЗ 1 0 0 1 180 595 Тм (легкость либо отсутствует, либо встречается очень редко.Сайты такие как эти будут) Tj 110 Тз 1 0 0 1 180 581 Тм (пригоден для обеспечения жуками карантинного родительского стада, от которого дис-) Tj 108 ТЗ 1 0 0 1 180 567 Тм (потомство, прошедшее проверку на легкость, может быть привлечено для выпуска в поле.) Tj 90 тз 1 0 0 1 58 31 Тм (4) Тдж 0 г ET конечный поток эндообъект 63 0 объект [] эндообъект 78 0 объект >поток БТ 0 0 0 рг /T1_0 12 Тф 97 Тз 178 775 Тд (\(iv\))Tj 2000 Тз-178 66 Тд (\t)Tj 102 Тз 207 -66 Тд (жертвенное исследование доли потомства каждого репро-)Tj 98 Тз 0 -14 ТД (порождая пару;)Tj 91 Тз-28-27 Тд (\(v\))Tj 2000 Тз-179 107 Тд (\t)Tj 102 Тз 207 -108 Тд (принятие строгих гигиенических процедур для предотвращения возможности)Tj 99 Тз Т* (передача болезней между гнездовыми колониями.)Tj -29 -28 Тд (Жуки собраны в трех точках: Ятели \(205 жуков\) и Ч\ обхам) Tj 102 Тз 1 -14 Тд (Обычные \(113 жуков\) на юге Англии и в Окворте, Йоркшир \(59\). )Tj 100 Тз Т* (жуки\). Индивидуально содержавшиеся жуки были отправлены в Новую Зеландию, когда ре)Tj 94 Тз 0 -13 ТД (их фракция была исследована вскоре после прибытия на наличие микро\ споридиан)Tj 102 Тз 0 -14 ТД (споры. Споры часто обнаруживались во муке жуков: f\ ром)Tj 94 Тз Т* (как Yately, так и Chobham Common, а также в мертвых жуках из этих тес,)Tj 103 Тз Т* (но только во фрасе одного жука из Окворта.Все жуки происходят\ нг)Tj 97 Тз Т* (из Ятели и Чобхэм Коммон были уничтожены. Двадцать пар вереска) Tj 99 Тз Т* (жуков из Окворта поселили в отдельных вольерах. Четыре \ из)Tj 101 Тз Т* (эти пары отложили оплодотворенные яйца, из которых вылупились быстро растущие й)Tj 98 Тз Т* (очевидно, здоровые личинки. Они были выращены до получения приблизительно\ ely)Tj 96 Тз Т* (300 взрослых особей. При патологоанатомическом исследовании жуков Окворта инфекция \ был)Tj 99 Тз 0 -13 ТД (обнаружен у самца из ненесущей пары.Инфекции не обнаружены\ г в)Tj 101 Тз 0 -14 ТД (любой другой жук из Окворта, в принесенных в жертву яйцах и личинках из ом)Tj 99 Тз Т* (в размножающихся парах или у личинок, погибающих в процессе выращивания). 106 Тз 0 -28 ТД (Мы делаем вывод, что весьма вероятно, что поколение F1 помещено на карантин)Tj 99 Тз 0 -14 ТД (Вересковые жуки Окворта не содержат микроспоридий.) Tj /T1_0 25 Тф 96 Тз-46-60 Тд (5.)Tj 2000 Тз-133 446 Тд (\t)Tj 117 Тз 180 -447 Тд (Вероятность перекрестной инфекции)Tj 120 Тз-1-26 Тд (от заражения микроспоридиями) Tj 118 Тз 1 -26 Тд (насекомые Новой Зеландии) Tj /T1_0 12 Тф 100 Тз-1-46 Тд (Микроспоридии ряда родов заражают некоторые из наиболее н-)Tj 1-13 тд (секты вредителей, такие как злаковая личинка, гусеница порина, аргентинский стеблевой долгоносик\ л и)Тj 102 Тз Т* (листовертки, а также важные полезные насекомые, такие как пчелы.Если ре\ сдан в аренду)Tj 101 Тз-1-15 Тд (в поле вересковые жуки поделятся своим географическим ареалом с\ такой)Tj 104 Тз Т* (насекомые вместе с множеством менее распространенных видов. Некоторые из них)Tj 99 Тз Т* (менее известные виды также могут содержать микроспоридии. Однако опыт\ )Tj 1-14 тд (демонстрирует, что большинство микроспоридий специфичны для своего хозяина и что\ спец-)Tj 98 Тз-1-14 Тд (Случаи с высокой степенью перекрестной инфекционности в полевых условиях встречаются редко. Мы c\ включить)Tj 100 Тз 0 -13 ТД (что риск наиболее серьезного заболевания верескового жука связан не с\ спец-)Tj 102 Тз 0 -14 ТД (роды новозеландских микроспоридий, но от их местных патогенов и)Tj 98 Тз Т* (следует продолжать прилагать неустанные усилия для обеспечения безболезненного st\ atus of)Tj 100 Тз Т* (популяции жуков, установленных на карантине, и жуков, выпущенных в о)Tj 91 Тз Т* (поле.)Tj 100 Тз 361 -101 Тд (3) Тдж ET конечный поток эндообъект 54 0 объект >/Высота 117/Тип/XObject>>поток $ьEV»»‘»>[email protected]쎍2?,»;##tDDDDyHEфGdtGED|]»»»»»#)GtGdvmDDDDDDFIs1FGEtGEt]Q0莋vG˲:0|duyDtG»=)3#Z( «»24F»»#*ьԍH очевидно2.3C$)V>_.G|6″»»»»#*#xtc#FDDDDDDDd.>»;.t]GDDDDDDeZ.]˲:$»:0GGDxaFDDDDDyWE1Dta0″»» «»»2;#|

0]>]tGDu٪/ Db$GRVh.#[email protected]»»»»»»2G b»#1ˑvG莋>GE:#E- F#tGDuTFGԘFA&ЉD~$taB#)BN»:EDtGDtBuF4C*/ 8莈A Ѿ»»»»»»#$쎋t]GDtaDtaDDDDDDDd1yWDtG:#]:6 откровенно #莈0n0″»»»2aDtGGaDx#4GQn#tNtGDtaF0|:#DDDDDDFB *#т6|#:#?EHZADDDFEB)W䰬.;b»»»»#& $ʲ6d|o.ʼ0ˣȻ.0EDDDDDFEsGDtc#h5qF#Ԋ$UF&j»x»»»»»# H]#DDDDGGEΪ»»»»# HGE:#菑̎DDDDDFFьDtmDz»»»»9& конечный поток эндообъект 50 0 объект >/Шрифт>/ProcSet 3 0 R>> эндообъект 45 0 объект > эндообъект 46 0 объект >поток конечный поток эндообъект 48 0 объект >поток БТ 0 г /OP11Font0 11 Tf 0 0 0 рг 111 ТЗ 1 0 0 1 178 775 Тм (признаны из-за их коварного характера, проявляющегося в снижении темпов роста) Tj 105 ТЗ 1 0 0 1 179 761 Тм (медленно накапливающаяся смертность личинок и нарушение репродуктивной функции.) тж /OP11Font0 28 Tf 106 ТЗ 1 0 0 1 179 700 тм (Передача болезней и) Tj 107 ТЗ 1 0 0 1 179 674 Тм (инфицированные ткани) Tj /OP11Font0 11 Tf 1 0 0 1 179 628 Тм (Существуют два основных механизма микроспоридиозной инфекции у насекомых: через) Tj 113 ТЗ 1 0 0 1 179 614 Тм (фекалии или внутрь через яйцо. Чтобы определить вероятность каждого) Tj 107 ТЗ 1 0 0 1 179 600 тм (механизм передачи у верескового жука, окрашенные мазки фекальных мате-) Tj 1 0 0 1 179 586 Тм (риал \(frass\), яйца и репродуктивные ткани инфицированных особей были экс-) Tj 110 Тз 1 0 0 1 179 572 Тм (аминировано под световым микроскопом при увеличениях от 340x до) Tj 106 ТЗ 1 0 0 1 180 558 Тм (1440х.Обильные споры были обнаружены в муке и тканях кишечника инфицированных) Tj 110 Тз 1 0 0 1 179 545 Тм (жуки. Микроспоридии в яйцах и в не-) Tj не обнаружены. 109 ТЗ 1 0 0 1 178 531 Тм (оболочечные яйца инфицированных самок. Споры микроспоридов или вегетативные стадии) Tj 110 Тз 1 0 0 1 179 517 Тм (были обнаружены также в гемоцитах, слюнных железах, эпителиальной ткани и жиро-) Tj 104 ТЗ 1 0 0 1 179 504 Тм (клетки тела.) Tj 106 ТЗ 1 0 0 1 179 475 Тм (Эти результаты убедительно указывают на то, что потребление спор, попавших в муку, является наиболее частым) Tj 109 ТЗ 1 0 0 1 179 461 Тм (основной механизм передачи микроспоридиозных инфекций через-) Tj 111 ТЗ 1 0 0 1 179 447 Тм (между вересковыми жуками.Невыявление яичных инфекций или инфекций) Tj 108 ТЗ 1 0 0 1 179 433 Тм (яйца внутри овариол, полностью не исключает трансовариальную передачу) Tj 110 Тз 1 0 0 1 179 419 Тм (как источник новых инфекций, но предполагает, что это вряд ли является ключевым) Tj 106 ТЗ 1 0 0 1 179 406 Тм (механизм передачи болезни.) Tj /OP11Font0 28 Tf 90 тз 1 0 0 1 132 345 Тм (4.) Тj 2000 тз 1 0 0 1 0 841 Тм (\т) Тj 105 ТЗ 1 0 0 1 180 344 Тм (Устранение болезни от) Tj 109 ТЗ 1 0 0 1 180 318 Тм (карантинный вересковый жук) Tj 108 ТЗ 1 0 0 1 179 293 Тм (население) Tj /OP11Font0 11 Tf 118 ТЗ 1 0 0 1 179 246 Тм (Создание безболезненной популяции карантинного вереска) Tj 111 ТЗ 1 0 0 1 179 232 Тм (Жуки были предприняты с использованием комбинации методов.Это были разработки-) Tj 108 ТЗ 1 0 0 1 179 218 Тм (отредактировано в консультации с д-ром Полин Сиретт, руководителем проекта, и г-ном Линдси) Tj 110 Тз 1 0 0 1 179 204 Тм (Смит, техник, ответственный за выращивание жуков в квартале насекомых) Tj 107 ТЗ 1 0 0 1 179 190 Тм (Антинное предприятие в Линкольне. Принятые подходы включали:) Tj 104 ТЗ 1 0 0 1 179 163 Тм (\(я\)) Тj 2000 тз 1 0 0 1 0 841 Тм (\т) Тj 109 ТЗ 1 0 0 1 207 163 Тм (коллекция жуков из разных географических мест в) Tj 107 ТЗ 1 0 0 1 208 149 Тм (надежда обнаружить популяцию, свободную от микроспоридий;) Tj 96 тз 1 0 0 1 179 121 Тм (\(ii\)) Tj 2000 тз 1 0 0 1 0 841 Тм (\т) Тj 113 ТЗ 1 0 0 1 207 121 Тм (содержание жуков индивидуально в пробирках до тех пор, пока они не станут больными) Tj 107 ТЗ 1 0 0 1 207 106 Тм (определено при микроскопическом исследовании их муки;) Tj 102 ТЗ 1 0 0 1 179 78 Тм (\(iii\)) Tj 2000 тз 1 0 0 1 0 841 Тм (\т) Тj 107 ТЗ 1 0 0 1 207 77 Тм (установка изолированных пар самцов и самок явно здоровых жуков) Tj 109 ТЗ 1 0 0 1 207 63 Тм (и выращивание их потомства в виде изолированных линий до полного выздоровления) Tj 108 ТЗ 1 0 0 1 207 49 Тм (взрослые могут быть подтверждены патологоанатомическим исследованием;) Tj 72 ТЗ 1 0 0 1 57 30 Тм (2) Тj 0 г ET конечный поток эндообъект 41 0 объект [] эндообъект 77 0 объект >поток БТ 0 0 0 рг /T1_0 28 Тф 80 Тз 133 768 Тд (1.)Tj 109 Тз 45 0 Тд (Введение) Tj /T1_0 11 Тф 108 Тз 0 -46 ТД (Этот отчет является кратким изложением работы, проведенной для доктора Х. Киз, DOC Turangi,) Tj 107 Тз 0 -14 ТД (по контракту с Отделом науки и исследований Департамента охраны\ р-)Tj 105 Тз Т* (vation, Wellington \(номер ссылки: FLO 017\). Цель разрешения\ поиск)Tj 108 Тз 0 -15 ТД (должна была предоставлять консультации и диагностическую помощь компании Landcare Research в \ или-)Tj 107 Тз 0 -13 ТД (для выявления и устранения микроспоридиоза \(Protozoa\) болезни из q\ uaran-)Tj 116 Тз 0 -14 ТД (лабораторные популяции верескового жука)Tj /T1_1 11 Тф 114 Тз 261 0 Тд (Лохмея шовная.)Tj /T1_0 11 Тф 106 Тз-261-14 Тд (Популяции вересковых жуков импортируются из Великобритании компанией Landcare \ для)Tj 1-13 тд (оценка вереска как средства биоконтроля. В предыдущей работе \(Значимый\ анс)Tj 107 Тз-1-14 Тд (микроспоридиоз верескового жука) Tj /T1_1 11 Тф 111 Тз 228 0 Тд (Lochmaea suturalis,) Tj /T1_0 11 Тф 106 Тз 104 -1 Тд (Отчет)Tj 111 Тз-332-13 Тд (в DOC, июль 1994 г.), автор сообщил об обнаружении микроспоридии. ан)Tj 1-14 тд (заболевание в карантинных популяциях вересковых жуков, завезенных из южных )Tj 107 Тз-1-14 Тд (Англия и консультировал по возможным подходам к получению свободного от болезней сто\ ск.)Tj 113 Тз 0 -15 ТД (Действующий контракт направлен на использование этих предложений для получения\ в)Tj 112 Тз 0 -13 ТД (здоровые популяции до возможного выпуска и для ответа на конкретные вопросы\ с-)Tj 111 Тз 0 -14 ТД (сведения о механизмах передачи микроспоридий. Контракт)Tj 108 Тз Т* (просил совета и услуг по четырем конкретным вопросам:)Tj 107 Тз 0 -27 ТД (\(1\))Tj 2000 Тз-178 355 Тд (\t)Tj 107 Тз 207 -355 Тд (Как передается микроспоридиоз?) Tj 100 Тз-28-28Тд (\(2\))Tj 2000 Тз-179 383 Тд (\t)Tj 107 Тз 206 -383 Тд (Какие ткани поражает микроспоридан?) Tj 100 Тз-27-29 Тд (\(3\))Tj 2000 Тз-179 412 Тд (\t)Tj 103 Тз 206 -412 Тд (Какие конкретно методы следует использовать в интенсивной линейной селекции для устранения -)Tj 107 Тз 1 -13 Тд (назовите болезнь?) Tj 100 Тз-28-27 Тд (\(4\))Tj 2000 Тз-179 452 Тд (\t)Tj 107 Тз 207 -453 Тд (Присутствует ли перекрестная передача микроспоридий в Новой Зеландии) Tj 109 Тз 0 -14 ТД (может представлять серьезную угрозу для жука, если его выпустят сюда?)Tj /T1_0 28 Тф 90 Тз-75-61 Тд (2.)Tj 104 Тз 47 0 Тд (Микроспоридия)Tj /T1_0 11 Тф 105 Тз 0 -47 ТД (Микроспориды — спорообразующие простейшие, облигатные паразиты широкий)Tj 109 Тз 0 -14 ТД (ассортимент насекомых и других беспозвоночных. Они являются одними из самых широких\ ly)Tj 107 Тз Т* (встречающиеся возбудители насекомых, причем многие виды описаны от жуков \ а)Tj 112 Тз Т* (личинки чешуекрылых. Они часто встречаются с высокой частотой в полевых популяциях). а-)Tj 109 Тз-1-14 Тд (там, где они могут вызвать значительную смертность и снизить фертильность). у и)Тj 110 Тз Т* (плодовитость инфицированных выживших.Микроспоридиозные инфекции встречаются в некоторых случаях. из)Tj 107 Тз 1 -14 Тд (самые важные наши насекомые-вредители, в том числе листовертки, травяная личинка, пори\ на кот-)Tj 105 Тз 0 -13 ТД (гусеница и аргентинский стеблевой долгоносик.) Tj 109 Тз-1-28 Тд (Микроспоридии поражают широкий спектр тканей организма, включая кишечник, листву. дин)Tj 121 Тз 0 -14 ТД (к передаче между людьми через фекальное загрязнение. Некоторые)Tj 107 Тз 1 -14 Тд (микроспориды поражают развивающиеся яйца и передаются между поколениями). ns)Tj 106 Тз-1-15 Тд (внутри яйца.Микроспоридиозные инфекции особенно опасны. проб-)Tj 112 Тз 0 -15 ТД (лем в разведении насекомых из-за их готовых средств передачи как с\ в)Tj 110 Тз 0 -14 ТД (и между поколениями. Инфекции лабораторных популяций часто переходят u\ н-)Tj 100 Тз 361 -40 Тд (1)Tj ET конечный поток эндообъект 31 0 объект >/Высота 117/Тип/XObject>>поток *DtaF%ʔGFGF2DDDDemDtGDtGEԁȎ莄DDF8&qB»1:ht»1hGGaC’Dx]8″»»#*t]FtGEфGEt_#VEȎdtGD|_.|#tGF».»»»»»»#*:#h0莎#yG~» «»»»»# Hˢ#h#ts4_1Dv]GgDDDDDDDeYt]DtGEфm:.GQh3:#tGь#»>b#|DDDrMG.&[email protected]#.»»»»»2(«#Ȏˢ::#FGFaDDDDDFI2:#|:0莋 откровенно 莈c.DtGEGQhфGE#h»:4_/F2:# ǑtmEQ’DtGF#:GѴGDtG:»»»»2MrV!0꣒eZ»»yJD]tIhMO B1*ԥ!G конечный поток эндообъект 33 0 объект > эндообъект 34 0 объект > эндообъект 29 0 объект [] эндообъект 28 0 объект [23 0 Р 25 0 Р] эндообъект 16 0 объект >/Высота 117/Тип/XObject>>поток *Qy j#*ȎGDtGDDDGyDtGF## DB*0\F»»9Pmˣ>/Font>/ProcSet 3 0 R>> эндообъект 20 0 объект > эндообъект 21 0 объект > эндообъект 22 0 объект > эндообъект 18 0 объект >/Высота 43/Тип/XObject>>поток PAm oHspoke O;+^ +bҲ;V*PG конечный поток эндообъект 23 0 объект >поток д 0 0 0 рг 1 0 0 1 173 188 см 8 0 0 10 0 0 см /picture_0 Сделать Вопрос конечный поток эндообъект 25 0 объект >поток БТ 0 г /OP11Font0 9 Tf 0 0 0 рг 86 ТЗ 1 0 0 1 175 227 Тм (Этот отчет подготовлен по заказу Тонгариро/Taupo Conservancy and Science & Research Division) Tj 88 ТЗ 1 0 0 1 175 209 Тм (ISSN 1171-9834) Тдж 86 ТЗ 1 0 0 1 184 190 Тм (1997 Департамент консервации, П.O. Box 10-420, Веллингтон, Новая Зеландия) Tj 85 ТЗ 1 0 0 1 175 172 Тм (Ссылку на материалы в этом отчете следует давать следующим образом:) Tj 88 ТЗ 1 0 0 1 175 154 Тм (Вигли, П.Дж., 1997 г.) Tj 85 ТЗ 1 0 0 1 175 145 Тм (Ликвидация микроспоридий из карантинных популяций вересковых жуков.) Tj /OP11Font1 9 Tf 87 ТЗ 1 0 0 1 174 135 Тм (Научные заметки по сохранению, №) Tj /OP11Font0 9 Tf 86 ТЗ 1 0 0 1 311 135 Тм (141, Департамент консервации, Веллингтон.) тж 85 ТЗ 1 0 0 1 174 117 Тм (Ключевые слова: вересковый жук,) Tj /OP11Font1 9 Tf 89 ТЗ 1 0 0 1 259 116 Тм (Lochmaea suturalis,) Tj /OP11Font0 9 Tf 85 ТЗ 1 0 0 1 327 116 Тм (микроспоридии, возбудитель, фрасс.) Tj 0 г ET конечный поток эндообъект 14 0 объект [] эндообъект 13 0 объект [8 0 Р 10 0 Р] эндообъект 5 0 объект >/Высота 117/Тип/XObject>>поток % ?$Gts7sHvDDDDd֢[email protected];.»:I2

y0DDFI&*?U:#:ʼ9yDDe»#y#& конечный поток эндообъект 12 0 объект >/Шрифт>/ProcSet 3 0 R>> эндообъект 7 0 объект > эндообъект 8 0 объект >поток конечный поток эндообъект 10 0 объект >поток БТ 0 г /OP11Font0 28 Tf 0 0 0 рг 92 тз 1 0 0 1 181 728 Тм (Элиминация микроспоридий) Tj 93 ТЗ 1 0 0 1 181 704 Тм (инфекции от карантина) Tj 95 тз 1 0 0 1 181 679 Тм (популяции вересковых жуков) Tj /OP11Font0 11 Tf 1 0 0 1 181 620 Тм (П Дж.Вигли) ТиДжей 103 ТЗ 1 0 0 1 181 606 Тм (Биодискавери, Новая Зеландия) Tj 101 ТЗ 1 0 0 1 182 591 Тм (197 Аткинсон-роуд) Т.Дж. 103 ТЗ 1 0 0 1 181 578 Тм (Титиранги) Tj 102 ТЗ 1 0 0 1 180 564 Тм (Окленд) Tj 106 ТЗ 1 0 0 1 180 102 Тм (Опубликовано) Tj 107 ТЗ 1 0 0 1 180 87 Тм (Департамент консервации) Tj 103 ТЗ 1 0 0 1 180 73 Тм (Головной офис, а/я 10-420,) Tj 105 ТЗ 1 0 0 1 180 59 Тм (Веллингтон, Новая Зеландия) Tj 0 г ET конечный поток эндообъект 75 0 объект > эндообъект внешняя ссылка 0 80 0000000006 65535 ф 0000003578 00000 н 0000000093 00000 н 0000005118 00000 н 0000003664 00000 н 0000032198 00000 н 0000000009 00001 ф 0000032689 00000 н 0000033852 00000 н 0000000011 00001 ф 0000033900 00000 н 0000000017 00001 ф 0000032583 00000 н 0000032167 00000 н 0000032148 00000 н 0000003788 00000 н 0000026739 00000 н 0000000019 00001 ф 0000030722 00000 н 0000000024 00001 ф 0000027225 00000 н 0000028389 00000 н 0000029554 00000 н 0000030994 00000 н 0000000026 00001 ф 0000031112 00000 н 0000000032 00001 ф 0000027066 00000 н 0000026707 00000 н 0000026688 00000 н 0000003914 00000 н 0000023521 00000 н 0000000035 00001 ф 0000024389 00000 н 0000025538 00000 н 0000000036 00001 ф 0000000037 00001 ф 0000000038 00001 ф 0000000039 00001 ф 0000000040 00001 ф 0000000044 00001 ф 0000019586 00000 н 0000004089 00000 н 0000013489 00000 н 0000000047 00001 ф 0000014486 00000 н 0000015650 00000 н 0000000049 00001 ф 0000015699 00000 н 0000000055 00001 ф 0000014378 00000 н 0000013457 00000 н 0000013438 00000 н 0000004215 00000 н 0000011335 00000 н 0000000057 00001 ф 0000012289 00000 н 0000000058 00001 ф 0000000059 00001 ф 0000000060 00001 ф 0000000061 00001 ф 0000000062 00001 ф 0000000066 00001 ф 0000007841 00000 н 0000004378 00000 н 0000004555 00000 н 0000000069 00001 ф 0000005166 00000 н 0000006330 00000 н 0000000071 00001 ф 0000006379 00000 н 0000000000 00001 ф 0000005010 00000 н 0000004523 00000 н 0000004504 00000 н 0000034660 00000 н 0000000016 00000 н 0000019605 00000 н 0000007860 00000 н 0000000127 00000 н трейлер ]>> startxref 34837 %%EOF 76 0 объект > эндообъект 80 0 объект > эндообъект 81 0 объект > эндообъект 82 0 объект >поток 2009-01-21T09:23:40ZOmniСтраница 11 http://www.scansoft.com2009-01-21T09:27:02+13:002009-01-21T09:27:02+13:00OmniPage 11 http://www.scansoft.comapplication/pdf

  • Ликвидация микроспоридий из популяций вересковых жуков, находящихся на карантине
  • casn142
  • Пи Джей Вигли
  • UUID:8833a414-2a11-4129-a600-34b839097275uuid:693d671d-62cf-480f-84dd-465e5943a930 конечный поток эндообъект внешняя ссылка 0 1 0000000006 65535 ф 76 1 0000036594 00000 н 80 3 0000036731 00000 н 0000037037 00000 н 0000037086 00000 н трейлер ]/Предыдущая 34837 >> startxref 41054 %%EOF 2 0 объект > эндообъект 64 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 67 0 объект > эндообъект 76 0 объект > эндообъект 80 0 объект > эндообъект 83 0 объект > эндообъект 84 0 объект > эндообъект 85 0 объект > эндообъект 86 0 объект > эндообъект 87 0 объект > эндообъект 88 0 объект > эндообъект 89 0 объект > эндообъект 90 0 объект > эндообъект 91 0 объект > эндообъект 92 0 объект > эндообъект 93 0 объект >поток БТ 0 0 0 рг /T1_0 28 Тф 132 767 тд (6 .)Tj 2000 Тз-132 74 Тд (\t)Tj 104 Тз 180 -75 Тд (Поздний результат)Tj /T1_0 11 Тф 112 Тз 0 -46 ТД (24 июня мы исследовали мазки муки, взятые у вересковых жуков) Tj 108 Тз 0 -14 ТД (собраны в Шотландии и недавно помещены на карантин в Новой Зеландии. Споры мы\ ре)Tj 110 Тз Т* (не обнаружено во фракциях жуков, собранных в озерах Лох-Линне и Ранно). ск)Tj 107 Тз 0 -13 ТД (Мор, но были замечены в муке жуков из деревни Гленкоу.) Tj 111 Тз 0 -28 ТД (Последние результаты показывают, что микроспоридиоз широко распространен. ребро-)Tj 107 Тз 0 -14 ТД (используется в британских популяциях вересковых жуков.Однако неспособность \ обнаружить)Tj 110 Тз Т* (инфекции на двух участках в Шотландии и у жуков из Окворта, штат Йоу). rk-)Tj 109 Тз Т* (шире) показывает, что можно локализовать популяции, в которых t\ он не-)Tj 111 Тз Т* (легкость либо отсутствует, либо встречается очень редко. Такие сайты, как эти, буду)Tj 110 Тз Т* (пригоден для предоставления жуков на карантинное родительское стадо, от которого д\ is-)Tj 108 Тз Т* (потомство, прошедшее проверку на легкость, может быть привлечено для выпуска в поле.)Tj 90 Тз-122-536 Тд (4)Тдж ET конечный поток эндообъект 94 0 объект > эндообъект 95 0 объект > эндообъект 96 0 объект >поток 2009-01-21T09:23:40ZOmniPage 11 http://www.scansoft.com2009-01-21T09:28:54+13:002009-01-21T09:28:54+13:00OmniPage 11 http://www. scansoft.comapplication/pdf
  • Ликвидация микроспоридий из карантинных популяций вересковых жуков
  • casn142
  • Пи Джей Вигли
  • uuid:8833a414-2a11-4129-a600-34b839097275uuid:b03185c3-37e9-44a4-95c5-2f3cb9807005 конечный поток эндообъект внешняя ссылка 0 1 0000000006 65535 ф 2 1 0000041334 00000 н 64 1 0000041401 00000 н 67 1 0000041564 00000 н 76 1 0000042713 00000 н 80 1 0000042850 00000 н 83 14 0000043156 00000 н 0000043203 00000 н 0000043281 00000 н 0000043328 00000 н 0000043419 00000 н 0000043466 00000 н 0000043585 00000 н 0000043632 00000 н 0000043776 00000 н 0000043823 00000 н 0000043979 00000 н 0000045208 00000 н 0000045255 00000 н 0000045332 00000 н трейлер ]/предыдущая 41054 >> startxref 49300 %%EOF

    Ликвидация микроспоридий из карантинных популяций вересковых жуков

    %PDF-1.6 % 76 0 объект > эндообъект 2 0 объект > эндообъект 79 0 объект >поток 2009-01-21T09:23:40ZOmniPage 11 http://www.scansoft.com2009-01-21T09:25:57+13:002009-01-21T09:25:57+13:00OmniPage 11 http://www. scansoft.comapplication/pdfuuid:8833a414-2a11-4129-a600-34b839097275uuid:4bf05748-7e44-4e26-90ae-2c2139ee1c83 конечный поток эндообъект 1 0 объект > эндообъект 4 0 объект > эндообъект 15 0 объект > эндообъект 30 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 42 0 объект > эндообъект 53 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 64 0 объект > эндообъект 74 0 объект [] эндообъект 73 0 объект [68 0 Р 70 0 Р] эндообъект 65 0 объект >/Высота 117/Тип/XObject>>поток KgG#4yE#»»»»#*htr#aQy6Gft]GDDDDDDeZ#>_#|mDtcZ! «&R$tBaDDdMH>(DtGN»»ԫ˳0DDDDd.##:0″»»#*

    тн.»»»»»»? конечный поток эндообъект 72 0 объект >/Шрифт>/ProcSet 3 0 R>> эндообъект 3 0 объект [/PDF/текст/изображениеB/изображениеC/изображениеI] эндообъект 67 0 объект > эндообъект 68 0 объект >поток конечный поток эндообъект 70 0 объект >поток БТ 0 г /OP11Font0 28 Tf 0 0 0 рг 71 Тз 1 0 0 1 132 767 Тм (6 .) Tj 2000 тз 1 0 0 1 0 841 Тм (\т) Тj 104 ТЗ 1 0 0 1 180 766 Тм (Поздний результат) Tj /OP11Font0 11 Tf 112 ТЗ 1 0 0 1 180 720 Тм (24 июня мы исследовали мазки, взятые у вересковых жуков) Tj 108 ТЗ 1 0 0 1 180 706 Тм (собраны в Шотландии и недавно помещены на карантин в Новой Зеландии.Споры были) Тж 110 Тз 1 0 0 1 180 692 Тм (не обнаружены в остатках жуков, собранных в озерах Лох-Линне и Раннок) Tj 107 ТЗ 1 0 0 1 180 679 Тм (Мор, но были замечены в муке жуков из деревни Гленко.) Tj 111 ТЗ 1 0 0 1 180 651 Тм (Последние результаты показывают, что микроспоридиоз широко распространен). 107 ТЗ 1 0 0 1 180 637 Тм (используется в британских популяциях вересковых жуков. Однако не удалось обнаружить) Tj 110 Тз 1 0 0 1 180 623 Тм (инфекции на двух участках в Шотландии и у жуков из Окворта, Йорк-) Tj 109 ТЗ 1 0 0 1 180 609 Тм (шире) показывает, что можно выделить популяции, в которых дис-) Tj 111 ТЗ 1 0 0 1 180 595 Тм (легкость либо отсутствует, либо встречается очень редко.Сайты такие как эти будут) Tj 110 Тз 1 0 0 1 180 581 Тм (пригоден для обеспечения жуками карантинного родительского стада, от которого дис-) Tj 108 ТЗ 1 0 0 1 180 567 Тм (потомство, прошедшее проверку на легкость, может быть привлечено для выпуска в поле.) Tj 90 тз 1 0 0 1 58 31 Тм (4) Тдж 0 г ET конечный поток эндообъект 63 0 объект [] эндообъект 78 0 объект >поток БТ 0 0 0 рг /T1_0 12 Тф 97 Тз 178 775 Тд (\(iv\))Tj 2000 Тз-178 66 Тд (\t)Tj 102 Тз 207 -66 Тд (жертвенное исследование доли потомства каждого репро-)Tj 98 Тз 0 -14 ТД (порождая пару;)Tj 91 Тз-28-27 Тд (\(v\))Tj 2000 Тз-179 107 Тд (\t)Tj 102 Тз 207 -108 Тд (принятие строгих гигиенических процедур для предотвращения возможности)Tj 99 Тз Т* (передача болезней между гнездовыми колониями.)Tj -29 -28 Тд (Жуки собраны в трех точках: Ятели \(205 жуков\) и Ч\ обхам) Tj 102 Тз 1 -14 Тд (Обычные \(113 жуков\) на юге Англии и в Окворте, Йоркшир \(59\). )Tj 100 Тз Т* (жуки\). Индивидуально содержавшиеся жуки были отправлены в Новую Зеландию, когда ре)Tj 94 Тз 0 -13 ТД (их фракция была исследована вскоре после прибытия на наличие микро\ споридиан)Tj 102 Тз 0 -14 ТД (споры. Споры часто обнаруживались во муке жуков: f\ ром)Tj 94 Тз Т* (как Yately, так и Chobham Common, а также в мертвых жуках из этих тес,)Tj 103 Тз Т* (но только во фрасе одного жука из Окворта.Все жуки происходят\ нг)Tj 97 Тз Т* (из Ятели и Чобхэм Коммон были уничтожены. Двадцать пар вереска) Tj 99 Тз Т* (жуков из Окворта поселили в отдельных вольерах. Четыре \ из)Tj 101 Тз Т* (эти пары отложили оплодотворенные яйца, из которых вылупились быстро растущие й)Tj 98 Тз Т* (очевидно, здоровые личинки. Они были выращены до получения приблизительно\ ely)Tj 96 Тз Т* (300 взрослых особей. При патологоанатомическом исследовании жуков Окворта инфекция \ был)Tj 99 Тз 0 -13 ТД (обнаружен у самца из ненесущей пары.Инфекции не обнаружены\ г в)Tj 101 Тз 0 -14 ТД (любой другой жук из Окворта, в принесенных в жертву яйцах и личинках из ом)Tj 99 Тз Т* (в размножающихся парах или у личинок, погибающих в процессе выращивания). 106 Тз 0 -28 ТД (Мы делаем вывод, что весьма вероятно, что поколение F1 помещено на карантин)Tj 99 Тз 0 -14 ТД (Вересковые жуки Окворта не содержат микроспоридий.) Tj /T1_0 25 Тф 96 Тз-46-60 Тд (5.)Tj 2000 Тз-133 446 Тд (\t)Tj 117 Тз 180 -447 Тд (Вероятность перекрестной инфекции)Tj 120 Тз-1-26 Тд (от заражения микроспоридиями) Tj 118 Тз 1 -26 Тд (насекомые Новой Зеландии) Tj /T1_0 12 Тф 100 Тз-1-46 Тд (Микроспоридии ряда родов заражают некоторые из наиболее н-)Tj 1-13 тд (секты вредителей, такие как злаковая личинка, гусеница порина, аргентинский стеблевой долгоносик\ л и)Тj 102 Тз Т* (листовертки, а также важные полезные насекомые, такие как пчелы.Если ре\ сдан в аренду)Tj 101 Тз-1-15 Тд (в поле вересковые жуки поделятся своим географическим ареалом с\ такой)Tj 104 Тз Т* (насекомые вместе с множеством менее распространенных видов. Некоторые из них)Tj 99 Тз Т* (менее известные виды также могут содержать микроспоридии. Однако опыт\ )Tj 1-14 тд (демонстрирует, что большинство микроспоридий специфичны для своего хозяина и что\ спец-)Tj 98 Тз-1-14 Тд (Случаи с высокой степенью перекрестной инфекционности в полевых условиях встречаются редко. Мы c\ включить)Tj 100 Тз 0 -13 ТД (что риск наиболее серьезного заболевания верескового жука связан не с\ спец-)Tj 102 Тз 0 -14 ТД (роды новозеландских микроспоридий, но от их местных патогенов и)Tj 98 Тз Т* (следует продолжать прилагать неустанные усилия для обеспечения безболезненного st\ atus of)Tj 100 Тз Т* (популяции жуков, установленных на карантине, и жуков, выпущенных в о)Tj 91 Тз Т* (поле.)Tj 100 Тз 361 -101 Тд (3) Тдж ET конечный поток эндообъект 54 0 объект >/Высота 117/Тип/XObject>>поток $ьEV»»‘»>[email protected]쎍2?,»;##tDDDDyHEфGdtGED|]»»»»»#)GtGdvmDDDDDDFIs1FGEtGEt]Q0莋vG˲:0|duyDtG»=)3#Z( «»24F»»#*ьԍH очевидно2.3C$)V>_.G|6″»»»»#*#xtc#FDDDDDDDd.>»;.t]GDDDDDDeZ.]˲:$»:0GGDxaFDDDDDyWE1Dta0″»» «»»2;#|

    0]>]tGDu٪/ Db$GRVh.#[email protected]»»»»»»2G b»#1ˑvG莋>GE:#E- F#tGDuTFGԘFA&ЉD~$taB#)BN»:EDtGDtBuF4C*/ 8莈A Ѿ»»»»»»#$쎋t]GDtaDtaDDDDDDDd1yWDtG:#]:6 откровенно #莈0n0″»»»2aDtGGaDx#4GQn#tNtGDtaF0|:#DDDDDDFB *#т6|#:#?EHZADDDFEB)W䰬.;b»»»»#& $ʲ6d|o.ʼ0ˣȻ.0EDDDDDFEsGDtc#h5qF#Ԋ$UF&j»x»»»»»# H]#DDDDGGEΪ»»»»# HGE:#菑̎DDDDDFFьDtmDz»»»»9& конечный поток эндообъект 50 0 объект >/Шрифт>/ProcSet 3 0 R>> эндообъект 45 0 объект > эндообъект 46 0 объект >поток конечный поток эндообъект 48 0 объект >поток БТ 0 г /OP11Font0 11 Tf 0 0 0 рг 111 ТЗ 1 0 0 1 178 775 Тм (признаны из-за их коварного характера, проявляющегося в снижении темпов роста) Tj 105 ТЗ 1 0 0 1 179 761 Тм (медленно накапливающаяся смертность личинок и нарушение репродуктивной функции.) тж /OP11Font0 28 Tf 106 ТЗ 1 0 0 1 179 700 тм (Передача болезней и) Tj 107 ТЗ 1 0 0 1 179 674 Тм (инфицированные ткани) Tj /OP11Font0 11 Tf 1 0 0 1 179 628 Тм (Существуют два основных механизма микроспоридиозной инфекции у насекомых: через) Tj 113 ТЗ 1 0 0 1 179 614 Тм (фекалии или внутрь через яйцо. Чтобы определить вероятность каждого) Tj 107 ТЗ 1 0 0 1 179 600 тм (механизм передачи у верескового жука, окрашенные мазки фекальных мате-) Tj 1 0 0 1 179 586 Тм (риал \(frass\), яйца и репродуктивные ткани инфицированных особей были экс-) Tj 110 Тз 1 0 0 1 179 572 Тм (аминировано под световым микроскопом при увеличениях от 340x до) Tj 106 ТЗ 1 0 0 1 180 558 Тм (1440х.Обильные споры были обнаружены в муке и тканях кишечника инфицированных) Tj 110 Тз 1 0 0 1 179 545 Тм (жуки. Микроспоридии в яйцах и в не-) Tj не обнаружены. 109 ТЗ 1 0 0 1 178 531 Тм (оболочечные яйца инфицированных самок. Споры микроспоридов или вегетативные стадии) Tj 110 Тз 1 0 0 1 179 517 Тм (были обнаружены также в гемоцитах, слюнных железах, эпителиальной ткани и жиро-) Tj 104 ТЗ 1 0 0 1 179 504 Тм (клетки тела.) Tj 106 ТЗ 1 0 0 1 179 475 Тм (Эти результаты убедительно указывают на то, что потребление спор, попавших в муку, является наиболее частым) Tj 109 ТЗ 1 0 0 1 179 461 Тм (основной механизм передачи микроспоридиозных инфекций через-) Tj 111 ТЗ 1 0 0 1 179 447 Тм (между вересковыми жуками.Невыявление яичных инфекций или инфекций) Tj 108 ТЗ 1 0 0 1 179 433 Тм (яйца внутри овариол, полностью не исключает трансовариальную передачу) Tj 110 Тз 1 0 0 1 179 419 Тм (как источник новых инфекций, но предполагает, что это вряд ли является ключевым) Tj 106 ТЗ 1 0 0 1 179 406 Тм (механизм передачи болезни.) Tj /OP11Font0 28 Tf 90 тз 1 0 0 1 132 345 Тм (4.) Тj 2000 тз 1 0 0 1 0 841 Тм (\т) Тj 105 ТЗ 1 0 0 1 180 344 Тм (Устранение болезни от) Tj 109 ТЗ 1 0 0 1 180 318 Тм (карантинный вересковый жук) Tj 108 ТЗ 1 0 0 1 179 293 Тм (население) Tj /OP11Font0 11 Tf 118 ТЗ 1 0 0 1 179 246 Тм (Создание безболезненной популяции карантинного вереска) Tj 111 ТЗ 1 0 0 1 179 232 Тм (Жуки были предприняты с использованием комбинации методов.Это были разработки-) Tj 108 ТЗ 1 0 0 1 179 218 Тм (отредактировано в консультации с д-ром Полин Сиретт, руководителем проекта, и г-ном Линдси) Tj 110 Тз 1 0 0 1 179 204 Тм (Смит, техник, ответственный за выращивание жуков в квартале насекомых) Tj 107 ТЗ 1 0 0 1 179 190 Тм (Антинное предприятие в Линкольне. Принятые подходы включали:) Tj 104 ТЗ 1 0 0 1 179 163 Тм (\(я\)) Тj 2000 тз 1 0 0 1 0 841 Тм (\т) Тj 109 ТЗ 1 0 0 1 207 163 Тм (коллекция жуков из разных географических мест в) Tj 107 ТЗ 1 0 0 1 208 149 Тм (надежда обнаружить популяцию, свободную от микроспоридий;) Tj 96 тз 1 0 0 1 179 121 Тм (\(ii\)) Tj 2000 тз 1 0 0 1 0 841 Тм (\т) Тj 113 ТЗ 1 0 0 1 207 121 Тм (содержание жуков индивидуально в пробирках до тех пор, пока они не станут больными) Tj 107 ТЗ 1 0 0 1 207 106 Тм (определено при микроскопическом исследовании их муки;) Tj 102 ТЗ 1 0 0 1 179 78 Тм (\(iii\)) Tj 2000 тз 1 0 0 1 0 841 Тм (\т) Тj 107 ТЗ 1 0 0 1 207 77 Тм (установка изолированных пар самцов и самок явно здоровых жуков) Tj 109 ТЗ 1 0 0 1 207 63 Тм (и выращивание их потомства в виде изолированных линий до полного выздоровления) Tj 108 ТЗ 1 0 0 1 207 49 Тм (взрослые могут быть подтверждены патологоанатомическим исследованием;) Tj 72 ТЗ 1 0 0 1 57 30 Тм (2) Тj 0 г ET конечный поток эндообъект 41 0 объект [] эндообъект 77 0 объект >поток БТ 0 0 0 рг /T1_0 28 Тф 80 Тз 133 768 Тд (1.)Tj 109 Тз 45 0 Тд (Введение) Tj /T1_0 11 Тф 108 Тз 0 -46 ТД (Этот отчет является кратким изложением работы, проведенной для доктора Х. Киз, DOC Turangi,) Tj 107 Тз 0 -14 ТД (по контракту с Отделом науки и исследований Департамента охраны\ р-)Tj 105 Тз Т* (vation, Wellington \(номер ссылки: FLO 017\). Цель разрешения\ поиск)Tj 108 Тз 0 -15 ТД (должна была предоставлять консультации и диагностическую помощь компании Landcare Research в \ или-)Tj 107 Тз 0 -13 ТД (для выявления и устранения микроспоридиоза \(Protozoa\) болезни из q\ uaran-)Tj 116 Тз 0 -14 ТД (лабораторные популяции верескового жука)Tj /T1_1 11 Тф 114 Тз 261 0 Тд (Лохмея шовная.)Tj /T1_0 11 Тф 106 Тз-261-14 Тд (Популяции вересковых жуков импортируются из Великобритании компанией Landcare \ для)Tj 1-13 тд (оценка вереска как средства биоконтроля. В предыдущей работе \(Значимый\ анс)Tj 107 Тз-1-14 Тд (микроспоридиоз верескового жука) Tj /T1_1 11 Тф 111 Тз 228 0 Тд (Lochmaea suturalis,) Tj /T1_0 11 Тф 106 Тз 104 -1 Тд (Отчет)Tj 111 Тз-332-13 Тд (в DOC, июль 1994 г.), автор сообщил об обнаружении микроспоридии. ан)Tj 1-14 тд (заболевание в карантинных популяциях вересковых жуков, завезенных из южных )Tj 107 Тз-1-14 Тд (Англия и консультировал по возможным подходам к получению свободного от болезней сто\ ск.)Tj 113 Тз 0 -15 ТД (Действующий контракт направлен на использование этих предложений для получения\ в)Tj 112 Тз 0 -13 ТД (здоровые популяции до возможного выпуска и для ответа на конкретные вопросы\ с-)Tj 111 Тз 0 -14 ТД (сведения о механизмах передачи микроспоридий. Контракт)Tj 108 Тз Т* (просил совета и услуг по четырем конкретным вопросам:)Tj 107 Тз 0 -27 ТД (\(1\))Tj 2000 Тз-178 355 Тд (\t)Tj 107 Тз 207 -355 Тд (Как передается микроспоридиоз?) Tj 100 Тз-28-28Тд (\(2\))Tj 2000 Тз-179 383 Тд (\t)Tj 107 Тз 206 -383 Тд (Какие ткани поражает микроспоридан?) Tj 100 Тз-27-29 Тд (\(3\))Tj 2000 Тз-179 412 Тд (\t)Tj 103 Тз 206 -412 Тд (Какие конкретно методы следует использовать в интенсивной линейной селекции для устранения -)Tj 107 Тз 1 -13 Тд (назовите болезнь?) Tj 100 Тз-28-27 Тд (\(4\))Tj 2000 Тз-179 452 Тд (\t)Tj 107 Тз 207 -453 Тд (Присутствует ли перекрестная передача микроспоридий в Новой Зеландии) Tj 109 Тз 0 -14 ТД (может представлять серьезную угрозу для жука, если его выпустят сюда?)Tj /T1_0 28 Тф 90 Тз-75-61 Тд (2.)Tj 104 Тз 47 0 Тд (Микроспоридия)Tj /T1_0 11 Тф 105 Тз 0 -47 ТД (Микроспориды — спорообразующие простейшие, облигатные паразиты широкий)Tj 109 Тз 0 -14 ТД (ассортимент насекомых и других беспозвоночных. Они являются одними из самых широких\ ly)Tj 107 Тз Т* (встречающиеся возбудители насекомых, причем многие виды описаны от жуков \ а)Tj 112 Тз Т* (личинки чешуекрылых. Они часто встречаются с высокой частотой в полевых популяциях). а-)Tj 109 Тз-1-14 Тд (там, где они могут вызвать значительную смертность и снизить фертильность). у и)Тj 110 Тз Т* (плодовитость инфицированных выживших.Микроспоридиозные инфекции встречаются в некоторых случаях. из)Tj 107 Тз 1 -14 Тд (самые важные наши насекомые-вредители, в том числе листовертки, травяная личинка, пори\ на кот-)Tj 105 Тз 0 -13 ТД (гусеница и аргентинский стеблевой долгоносик.) Tj 109 Тз-1-28 Тд (Микроспоридии поражают широкий спектр тканей организма, включая кишечник, листву. дин)Tj 121 Тз 0 -14 ТД (к передаче между людьми через фекальное загрязнение. Некоторые)Tj 107 Тз 1 -14 Тд (микроспориды поражают развивающиеся яйца и передаются между поколениями). ns)Tj 106 Тз-1-15 Тд (внутри яйца.Микроспоридиозные инфекции особенно опасны. проб-)Tj 112 Тз 0 -15 ТД (лем в разведении насекомых из-за их готовых средств передачи как с\ в)Tj 110 Тз 0 -14 ТД (и между поколениями. Инфекции лабораторных популяций часто переходят u\ н-)Tj 100 Тз 361 -40 Тд (1)Tj ET конечный поток эндообъект 31 0 объект >/Высота 117/Тип/XObject>>поток *DtaF%ʔGFGF2DDDDemDtGDtGEԁȎ莄DDF8&qB»1:ht»1hGGaC’Dx]8″»»#*t]FtGEфGEt_#VEȎdtGD|_.|#tGF».»»»»»»#*:#h0莎#yG~» «»»»»# Hˢ#h#ts4_1Dv]GgDDDDDDDeYt]DtGEфm:.GQh3:#tGь#»>b#|DDDrMG.&[email protected]#.»»»»»2(«#Ȏˢ::#FGFaDDDDDFI2:#|:0莋 откровенно 莈c.DtGEGQhфGE#h»:4_/F2:# ǑtmEQ’DtGF#:GѴGDtG:»»»»2MrV!0꣒eZ»»yJD]tIhMO B1*ԥ!G конечный поток эндообъект 33 0 объект > эндообъект 34 0 объект > эндообъект 29 0 объект [] эндообъект 28 0 объект [23 0 Р 25 0 Р] эндообъект 16 0 объект >/Высота 117/Тип/XObject>>поток *Qy j#*ȎGDtGDDDGyDtGF## DB*0\F»»9Pmˣ>/Font>/ProcSet 3 0 R>> эндообъект 20 0 объект > эндообъект 21 0 объект > эндообъект 22 0 объект > эндообъект 18 0 объект >/Высота 43/Тип/XObject>>поток PAm oHspoke O;+^ +bҲ;V*PG конечный поток эндообъект 23 0 объект >поток д 0 0 0 рг 1 0 0 1 173 188 см 8 0 0 10 0 0 см /picture_0 Сделать Вопрос конечный поток эндообъект 25 0 объект >поток БТ 0 г /OP11Font0 9 Tf 0 0 0 рг 86 ТЗ 1 0 0 1 175 227 Тм (Этот отчет подготовлен по заказу Тонгариро/Taupo Conservancy and Science & Research Division) Tj 88 ТЗ 1 0 0 1 175 209 Тм (ISSN 1171-9834) Тдж 86 ТЗ 1 0 0 1 184 190 Тм (1997 Департамент консервации, П.O. Box 10-420, Веллингтон, Новая Зеландия) Tj 85 ТЗ 1 0 0 1 175 172 Тм (Ссылку на материалы в этом отчете следует давать следующим образом:) Tj 88 ТЗ 1 0 0 1 175 154 Тм (Вигли, П.Дж., 1997 г.) Tj 85 ТЗ 1 0 0 1 175 145 Тм (Ликвидация микроспоридий из карантинных популяций вересковых жуков.) Tj /OP11Font1 9 Tf 87 ТЗ 1 0 0 1 174 135 Тм (Научные заметки по сохранению, №) Tj /OP11Font0 9 Tf 86 ТЗ 1 0 0 1 311 135 Тм (141, Департамент консервации, Веллингтон.) тж 85 ТЗ 1 0 0 1 174 117 Тм (Ключевые слова: вересковый жук,) Tj /OP11Font1 9 Tf 89 ТЗ 1 0 0 1 259 116 Тм (Lochmaea suturalis,) Tj /OP11Font0 9 Tf 85 ТЗ 1 0 0 1 327 116 Тм (микроспоридии, возбудитель, фрасс.) Tj 0 г ET конечный поток эндообъект 14 0 объект [] эндообъект 13 0 объект [8 0 Р 10 0 Р] эндообъект 5 0 объект >/Высота 117/Тип/XObject>>поток % ?$Gts7sHvDDDDd֢[email protected];.»:I2

    y0DDFI&*?U:#:ʼ9yDDe»#y#& конечный поток эндообъект 12 0 объект >/Шрифт>/ProcSet 3 0 R>> эндообъект 7 0 объект > эндообъект 8 0 объект >поток конечный поток эндообъект 10 0 объект >поток БТ 0 г /OP11Font0 28 Tf 0 0 0 рг 92 тз 1 0 0 1 181 728 Тм (Элиминация микроспоридий) Tj 93 ТЗ 1 0 0 1 181 704 Тм (инфекции от карантина) Tj 95 тз 1 0 0 1 181 679 Тм (популяции вересковых жуков) Tj /OP11Font0 11 Tf 1 0 0 1 181 620 Тм (П Дж.Вигли) ТиДжей 103 ТЗ 1 0 0 1 181 606 Тм (Биодискавери, Новая Зеландия) Tj 101 ТЗ 1 0 0 1 182 591 Тм (197 Аткинсон-роуд) Т.Дж. 103 ТЗ 1 0 0 1 181 578 Тм (Титиранги) Tj 102 ТЗ 1 0 0 1 180 564 Тм (Окленд) Tj 106 ТЗ 1 0 0 1 180 102 Тм (Опубликовано) Tj 107 ТЗ 1 0 0 1 180 87 Тм (Департамент консервации) Tj 103 ТЗ 1 0 0 1 180 73 Тм (Головной офис, а/я 10-420,) Tj 105 ТЗ 1 0 0 1 180 59 Тм (Веллингтон, Новая Зеландия) Tj 0 г ET конечный поток эндообъект 75 0 объект > эндообъект внешняя ссылка 0 80 0000000006 65535 ф 0000003578 00000 н 0000000093 00000 н 0000005118 00000 н 0000003664 00000 н 0000032198 00000 н 0000000009 00001 ф 0000032689 00000 н 0000033852 00000 н 0000000011 00001 ф 0000033900 00000 н 0000000017 00001 ф 0000032583 00000 н 0000032167 00000 н 0000032148 00000 н 0000003788 00000 н 0000026739 00000 н 0000000019 00001 ф 0000030722 00000 н 0000000024 00001 ф 0000027225 00000 н 0000028389 00000 н 0000029554 00000 н 0000030994 00000 н 0000000026 00001 ф 0000031112 00000 н 0000000032 00001 ф 0000027066 00000 н 0000026707 00000 н 0000026688 00000 н 0000003914 00000 н 0000023521 00000 н 0000000035 00001 ф 0000024389 00000 н 0000025538 00000 н 0000000036 00001 ф 0000000037 00001 ф 0000000038 00001 ф 0000000039 00001 ф 0000000040 00001 ф 0000000044 00001 ф 0000019586 00000 н 0000004089 00000 н 0000013489 00000 н 0000000047 00001 ф 0000014486 00000 н 0000015650 00000 н 0000000049 00001 ф 0000015699 00000 н 0000000055 00001 ф 0000014378 00000 н 0000013457 00000 н 0000013438 00000 н 0000004215 00000 н 0000011335 00000 н 0000000057 00001 ф 0000012289 00000 н 0000000058 00001 ф 0000000059 00001 ф 0000000060 00001 ф 0000000061 00001 ф 0000000062 00001 ф 0000000066 00001 ф 0000007841 00000 н 0000004378 00000 н 0000004555 00000 н 0000000069 00001 ф 0000005166 00000 н 0000006330 00000 н 0000000071 00001 ф 0000006379 00000 н 0000000000 00001 ф 0000005010 00000 н 0000004523 00000 н 0000004504 00000 н 0000034660 00000 н 0000000016 00000 н 0000019605 00000 н 0000007860 00000 н 0000000127 00000 н трейлер ]>> startxref 34837 %%EOF 76 0 объект > эндообъект 80 0 объект > эндообъект 81 0 объект > эндообъект 82 0 объект >поток 2009-01-21T09:23:40ZOmniСтраница 11 http://www.scansoft.com2009-01-21T09:27:02+13:002009-01-21T09:27:02+13:00OmniPage 11 http://www.scansoft.comapplication/pdf

  • Ликвидация микроспоридий из популяций вересковых жуков, находящихся на карантине
  • casn142
  • Пи Джей Вигли
  • UUID:8833a414-2a11-4129-a600-34b839097275uuid:693d671d-62cf-480f-84dd-465e5943a930 конечный поток эндообъект внешняя ссылка 0 1 0000000006 65535 ф 76 1 0000036594 00000 н 80 3 0000036731 00000 н 0000037037 00000 н 0000037086 00000 н трейлер ]/Предыдущая 34837 >> startxref 41054 %%EOF 2 0 объект > эндообъект 64 0 объект >/ProcSet[/PDF/Text]>>/Тип/Страница>> эндообъект 67 0 объект > эндообъект 76 0 объект > эндообъект 80 0 объект > эндообъект 83 0 объект > эндообъект 84 0 объект > эндообъект 85 0 объект > эндообъект 86 0 объект > эндообъект 87 0 объект > эндообъект 88 0 объект > эндообъект 89 0 объект > эндообъект 90 0 объект > эндообъект 91 0 объект > эндообъект 92 0 объект > эндообъект 93 0 объект >поток БТ 0 0 0 рг /T1_0 28 Тф 132 767 тд (6 .)Tj 2000 Тз-132 74 Тд (\t)Tj 104 Тз 180 -75 Тд (Поздний результат)Tj /T1_0 11 Тф 112 Тз 0 -46 ТД (24 июня мы исследовали мазки муки, взятые у вересковых жуков) Tj 108 Тз 0 -14 ТД (собраны в Шотландии и недавно помещены на карантин в Новой Зеландии. Споры мы\ ре)Tj 110 Тз Т* (не обнаружено во фракциях жуков, собранных в озерах Лох-Линне и Ранно). ск)Tj 107 Тз 0 -13 ТД (Мор, но были замечены в муке жуков из деревни Гленкоу.) Tj 111 Тз 0 -28 ТД (Последние результаты показывают, что микроспоридиоз широко распространен. ребро-)Tj 107 Тз 0 -14 ТД (используется в британских популяциях вересковых жуков.Однако неспособность \ обнаружить)Tj 110 Тз Т* (инфекции на двух участках в Шотландии и у жуков из Окворта, штат Йоу). rk-)Tj 109 Тз Т* (шире) показывает, что можно локализовать популяции, в которых t\ он не-)Tj 111 Тз Т* (легкость либо отсутствует, либо встречается очень редко. Такие сайты, как эти, буду)Tj 110 Тз Т* (пригоден для предоставления жуков на карантинное родительское стадо, от которого д\ is-)Tj 108 Тз Т* (потомство, прошедшее проверку на легкость, может быть привлечено для выпуска в поле.)Tj 90 Тз-122-536 Тд (4)Тдж ET конечный поток эндообъект 94 0 объект > эндообъект 95 0 объект > эндообъект 96 0 объект >поток 2009-01-21T09:23:40ZOmniPage 11 http://www.scansoft.com2009-01-21T09:28:54+13:002009-01-21T09:28:54+13:00OmniPage 11 http://www. scansoft.comapplication/pdf
  • Ликвидация микроспоридий из карантинных популяций вересковых жуков
  • casn142
  • Пи Джей Вигли
  • uuid:8833a414-2a11-4129-a600-34b839097275uuid:b03185c3-37e9-44a4-95c5-2f3cb9807005 конечный поток эндообъект внешняя ссылка 0 1 0000000006 65535 ф 2 1 0000041334 00000 н 64 1 0000041401 00000 н 67 1 0000041564 00000 н 76 1 0000042713 00000 н 80 1 0000042850 00000 н 83 14 0000043156 00000 н 0000043203 00000 н 0000043281 00000 н 0000043328 00000 н 0000043419 00000 н 0000043466 00000 н 0000043585 00000 н 0000043632 00000 н 0000043776 00000 н 0000043823 00000 н 0000043979 00000 н 0000045208 00000 н 0000045255 00000 н 0000045332 00000 н трейлер ]/предыдущая 41054 >> startxref 49300 %%EOF

    Роль NbTMP1, поверхностного белка спороплазмы, в заражении Nosema bombycis | Паразиты и переносчики

    Препарат

    N.bombycis и культивирование клеток

    Зрелые споры N. bombycis CQ1, полученные из Китайского центра сбора ветеринарных культур (CVCC № 102059), выделяли из инфицированных куколок тутового шелкопряда и очищали центрифугированием в градиенте плотности Перколла (21 000 г , 40 мин) [16]. Клетки клеточной линии яичников Spodoptera frugiperda (Sf9-III) в Sf-900 III™ SFM были приобретены у Thermo Fisher Scientific (Уолтем, Массачусетс, США) и культивированы в среде Sf-900™ III SFM при 28°C.

    Анализ последовательности NbTMP1 и амплификация открытой рамки считывания с N. bombycis . Аминокислотная последовательность NbTMP1 была отправлена ​​на сервер SignalP 5.1 (http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/) и на сервер TMHMM v.2.0 (http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM/) для прогнозирования сигнальных пептидов и трансмембранных доменов. Молекулярная масса и изоэлектрическая точка (pI) были предсказаны с использованием сервера ExPASy (http://web.expasy.org/compute_pi/), а область функции белка была предсказана с помощью SMART (http://smart.embl-heidelberg. де/). BLAST (https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/) использовали для анализа множественного выравнивания последовательностей. Мы клонировали внемембранную область NbTMP1 с использованием прямого праймера 5′- GGATCC ATGTTCAAGTCTAGTGATGA-3′, содержащего сайт рестрикции Bam HI (подчеркнутые основания), и обратного праймера 5′- GTCGAC CTTATCATTC-TCATTA’, содержащего сайт рестрикции Sal I (подчеркнутые основания).Комплементарную ДНК (кДНК) получали путем обратной транскрипции РНК из клеток Sf9-III (Thermo Fisher Scientific), инфицированных N. bombycis , и использовали в качестве ПЦР-матрицы. Продукты ПЦР очищали с помощью набора для гель-экстракции Omega Bio-tek, Inc. (Норкросс, Джорджия, США) и интегрировали в вектор pET-28, после чего векторы трансформировали в компетентные клетки штамма Escherichia coli DH5α. . Положительные рекомбинантные векторы pET-28- NbTMP1 были секвенированы компанией Sangon (Шанхай, Китай).

    Экспрессия рекомбинантного белка, получение моноклональных антител и иммуноблоттинг

    Идентифицированный вектор pET-28- NbTMP1 трансформировали для экспрессии в штамм E. coli Rosetta. Рекомбинантные бактерии индуцировали в течение 4 часов при 37 °C с помощью 0,5 мМ изопропил-β-D-тиогалактопиранозида (IPTG) в среде LB. Целевой белок очищали с помощью аффинной хроматографии с хелатированием никеля (Roche Applied Science, Penzberg, Germany). Все эксперименты на животных были одобрены Комитетом по этике лабораторных животных Юго-Западного университета (Чунцин, Китай) под номером разрешения AERCSWU2017-7.Мышей содержали в соответствии с рекомендациями комитета, корм и воду давали вволю. Самкам мышей BALB/c (в возрасте от 6 до 8 недель) четыре раза подкожно вводили rNbTMP1 (100 мкг/мышь), смешанный с полным/неполным адъювантом Фрейнда (1:1; Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури, США). ). Интервал между инъекциями составлял 7 дней. Моноклональные антитела (мАт) получали и подвергали скринингу, как описано ранее [17]. Подтипы mAb иммуноглобина G (IgG) определяли с использованием набора для изотипирования моноклональных антител мыши (Roche Applied Science) в соответствии с рекомендациями производителя.

    Для иммуноблоттинга белки зрелых спор и инфицированных клеток готовили методом разрушения стеклянных шариков [18], выделяли электрофорезом в полиакриламидном геле с додецилсульфатом натрия и переносили на мембраны PDVF (Roche Applied Science). После блокировки в 5% обезжиренном молоке, разведенном в TBST (150 мМ NaCl, 20 мМ Трис-HCl, 0,05% Твин-20), мембрану инкубировали в течение 1 ч в асците анти-NbTMP1 (1:1000). После трехкратной промывки мембрану инкубировали с козьим антимышиным IgG (1:5000; Sigma-Aldrich), конъюгированным с меткой пероксидазы хрена (HRP).Наконец, белковые полосы визуализировали с помощью реагентов для детекции вестерн-блоттинга ECL Plus (Bio-Rad, Hercules, CA, USA).

    Парафиновый срез средней кишки тутового шелкопряда

    Только что перелинявших личинок тутового шелкопряда пятого возраста подвергали голоданию в течение 1 дня, а затем кормили листьями шелковицы, покрытыми спорами (1 × 10 7 спор на личинку). Через 4 дня после заражения (dpi) инфицированных тутовых шелкопрядов убивали, а средние кишки собирали и хранили при температуре — 80 °C. Для заливки средние кишки сначала промывали три раза, по 15 минут каждый раз, в фосфатно-солевом буфере (PBS: 137 мМ NaCl, 10 мМ Na 2 HPO 4 , 2 мМ KH 2 PO 4 и 2 .7 мМ KCl), после чего средние кишки фиксировали в 4% параформальдегиде в течение 24 часов. Срезы готовили, как описано ранее [19]. После депарафинизации срезы кипятили в буферном растворе цитрата натрия в течение 10 мин, а затем использовали в исследованиях иммунолокализации.

    Иммунофлуоресцентный анализ

    Для проведения иммунофлуоресцентного анализа (ИФА) образцы фиксировали в 4% параформальдегиде, а затем трижды промывали в PBS. Затем образцы были проницаемы с помощью 0.5% Triton X-100 в течение 30 минут, а затем блокировали раствором PBS-бычий сывороточный альбумин в течение 1 часа при комнатной температуре. Далее образцы инкубировали с первичными антителами, включая асцитные анти-NbTMP1 (мышиные), или с отрицательными сывороточными и Nbβ-тубулиновыми (кроличьи) антителами, которые использовали для мечения меронтов N. bombycis [20]. После трехкратной промывки PBS для обнаружения связанных первичных антител и 4′,6-диамидино-2-фенилиндола ( DAPI) (Thermo Fisher Scientific) использовали для мечения ядра.Результаты наблюдали под конфокальным лазерным сканирующим микроскопом (Olympus, Токио, Япония).

    Исследование методом иммуноэлектронной микроскопии

    Инфицированные средние кишки тутового шелкопряда использовали для исследования методом иммуноэлектронной микроскопии (ИЭМ). Ультратонкие срезы (70 нм) готовили, как описано ранее [19], и помещали на никелевые сетки. После блокировки PBS-бычий сывороточный альбумин сетки инкубировали с анти-NbTMP1 асцитом, разведенным 1:30, или с отрицательной сывороткой при комнатной температуре в течение 1 часа. Затем сетки инкубировали с конъюгированным с золотом антимышиным IgG (Aldrich-Sigma), разведенным до 1:100.После окрашивания ураном и свинцом срезы исследовали и фотографировали с помощью просвечивающего электронного микроскопа JEM-1400 Plus TEM (JEOL Co. Ltd., Токио, Япония).

    РНК-интерференция NbTMP1

    Интерференционный фрагмент длиной 331 п.н. был выбран с помощью BLOCK-iT™ RNAi Designer (http://rnaidesigner.thermofisher.com/rnaiexpress/design.do). Фрагмент амплифицировали с праймерами F-RI-NbTMP1-T7 (5′-TAATACGACTCACTATAGGGAGATGTCTCTAGGGCAGATGC-3′) и R-RI-NbTMP1-T7 (5′-TAATACGACTCACTATAGGGAGATCCAGTACGTGTTGCCTG-3′) и использовали в качестве матрицы для синтеза двухцепочечных РНК (дцРНК).Для получения двухцепочечной РНК использовали крупномасштабную систему производства РНК RiboMAX™-T7 (Promega, Мэдисон, Висконсин, США). ДцРНК усиленного зеленого флуоресцентного белка (EGFP) использовали в качестве отрицательного контроля и синтезировали, как описано выше [17]. После культивирования клеток Sf9-III в 12-луночных планшетах в течение ночи в клетки трансфицировали 2 мкг дцРНК NbTMP1 или EGFP . Через 4 ч споры проращивали в 0,1 М КОН и добавляли к клеткам Sf9-III (споры:клетка, 5:1). Образцы инфицированных клеток собирали при 1, 3 и 5 днях на дюйм и немедленно хранили в PBS или TRIzol (Invitrogen, Карлсбад, Калифорния, США) при температуре — 80 °C.

    Количественный ПЦР-анализ в реальном времени

    Набор для выделения ДНК (Omega Bio-tek, Inc.) использовали для выделения геномной ДНК (гДНК) инфицированных клеток. Для приготовления кДНК использовали Total RNA Kit II (Omega Bio-tek, Inc.) и EvoScript Universal cDNA Master (Roche Applied Science). Количественную ПЦР в реальном времени (кПЦР) амплифицировали с использованием праймеров Fq-Nb TMP1 (5′-CCTATCTCTAAAGACGGT-3′) и Rq-Nb TMP1 (5′-CTTTTTCTATTTTGGCAGCA-3′) и праймеров эталонного гена Fq-SSU (5′-CTTTTTCTATTTTGGCAGCA-3′). ‘-CTGGGGATAGTATGATCGCAAGA-3′) и Rq-SSU (5′-CACAGCATCCATTGGAAACG-3’).Уровни транскрипции рассчитывали методом 2 -△△t значений с тремя повторами. GraphPad Prism v6.01 (GraphPad Software, Сан-Диего, Калифорния, США) использовался для проведения нескольких тестов t .

    Номер копии Nbβ-тубулина использовали для подсчета N. bombycis . гДНК образцов инфицированных клеток анализировали с помощью количественной ПЦР. Реакционные системы проводили с использованием праймеров: Nbβ-тубулин-qF (5′-AGAACCAGGAACAATGGACG-3′) и Nbβ-тубулин-qR (5′-AGCCCAATTATTATTACCAGCACC-3′).Используемый стандартный шаблон был описан в предыдущем исследовании [17]. Стандартная кривая охватывает шесть порядков величины (1,3 × 10 2 –10 7 ).

    Лаборатории по производству и карантину насекомых

    Лаборатория по производству и карантину насекомых, Центр лесного хозяйства Великих озер.

    Наша команда в Лабораториях по производству и карантину насекомых (IPQL) производит выращенных в лаборатории насекомых, которые можно приобрести для исследований вспышек лесных насекомых и экологически безопасных средств защиты.IPQL поддерживает ряд колоний насекомых, которые существуют с момента основания Центра лесного хозяйства Великих озер. В состав IPQL входят инсектарий, центр контроля качества, лаборатория разработки методов и карантинный центр.

    Точная идентификация этих колоний в научной литературе важна для воспроизводимой науки. Происхождение и история стад лабораторных насекомых на предприятии по производству многовидовых насекомых с установлением стандартизированной номенклатуры и обозначением формальных названий стад документирует историю существующих колоний IPQL и определяет стандартизированные названия для каждой колонии и семьи в процессе выращивания.Все клиенты должны использовать соответствующее название колонии и цитировать этот документ в своей работе, чтобы обеспечить точную коммуникацию и распознавание.

    Подробный пример условных обозначений, используемых в лабораториях по производству и карантину насекомых. Текстовая версия

    Стандартизированное соглашение об именах насекомых из лабораторий по производству и карантину насекомых: Glfc:IPQL:AglaWMA01, где Glfc — лабораторный код Центра лесного хозяйства Великих озер.IPQL представляет собой биржевой код Лаборатории по производству и карантину насекомых. Agla представляет код вида насекомого Anoplophora glabripennis. WMA представляет собой географическое происхождение Ворчестера, штат Массачусетс, где было обнаружено это насекомое. 01 представляет собой номер семьи.

    Лабораторные колонии являются важнейшим аспектом экспериментальной биологии и имеют многочисленные преимущества перед дикими организмами. Материал, собранный в полевых условиях, может сильно различаться по возрасту, состоянию питания, состоянию здоровья и генетическому разнообразию.Эти различия могут искажать экспериментальные результаты. Выращенные в лаборатории насекомые в основном однородны, и лабораторные колонии доступны для исследователей в течение всего года, что ускоряет исследовательские программы, которые могут быть ограничены доступностью стадий жизни насекомых, которые преходящи или бездействуют большую часть года.

     

    Инсектарий

    IPQL — единственное предприятие в Северной Америке, которое занимается выращиванием нескольких видов лесных насекомых, и единственное предприятие в мире, которое занимается массовым производством еловой листовертки ( Choristoneura fumiferana ).Большая часть ресурсов предназначена для производства диапаузирующих и недиапаузирующих штаммов с годовым производством около 3,5 миллионов личинок.

    Выращенные насекомые предназначены для использования в борьбе с вредителями и связанных с ними исследованиях в учреждениях Канадской лесной службы, а также в провинциальных/территориальных и государственных учреждениях. Они также используются для государственного образования, обучения и исследований в ряде университетов, учебных заведений и крупных учреждений Канады и США.

    IQPL может реагировать на меняющиеся потребности исследовательского сообщества по борьбе с вредителями, меняя перечень выращиваемых видов. При необходимости можно создавать новые колонии и для нескольких клиентов.

    Центр контроля качества

    Центр контроля качества контролирует производство, технологический процесс и продукцию для всех колоний насекомых. Этот объект состоит из аналитической лаборатории и офисных помещений.

    Аналитическая лаборатория содержит широкий спектр сложного оборудования.Команда Службы производства насекомых (IPS) также может получить доступ к множеству других типов оборудования и услуг в исследовательском комплексе Центра лесного хозяйства Великих озер, включая электронную микроскопию (как ПЭМ, так и сканирование), флуоресцентную микроскопию и спектрофотометрию. Эта доступность к оборудованию позволяет команде IPS выполнять широкий спектр действий, в том числе:

    • производство и очистка патогенов
    • гистологический препарат, окрашивание и микроскопическое исследование
    • ПЦР-обнаружение
    • РЕН-анализ
    • Анализ гибридизации ДНК

    Офис контроля качества содержит компьютеры, используемые для регистрации контроля качества, включая электронный мониторинг и отслеживание условий окружающей среды в комнатах и ​​камерах для выращивания.

    Программа обеспечения качества

    Для поддержания удовлетворенности клиентов и постоянной доступности насекомых необходимы здоровые колонии. Программа обеспечения качества в IPQL включает контроль производства, процессов и продукции для всех колоний насекомых.

    Производственный контроль Процедуры позволяют IPQL управлять согласованностью, надежностью и своевременностью выпуска продукции для каждой колонии насекомых. Ингредиенты рациона, оборудование, окружающая среда, графики и персонал контролируются на протяжении всего производства, поэтому любые отклонения в производительности немедленно исправляются.

    Процедуры управления технологическим процессом обеспечивают недопущение недопустимых отклонений в качестве продукции. Колонии отслеживаются на нескольких этапах производства с использованием определенных показателей для оценки качества и минимизации отклонений от заданных стандартов. Непрерывный анализ данных управления технологическим процессом позволяет выявить причины изменчивости и немедленно принять корректирующие меры до того, как отклонения вызовут проблемы в колониях. Используемые методы выращивания позволяют устранить плохих исполнителей или разработчиков на нескольких этапах развития, чтобы обеспечить здоровье и энергию колоний.Записи управления технологическим процессом позволяют прогнозировать будущую производительность каждой когорты каждой колонии.

    Контроль продукции Процедуры обеспечивают соответствие каждой колонии насекомых высоким стандартам качества, отвечающим требованиям клиентов. IPQL, уникальное среди многовидовых питомников, проводит рутинный микробиологический скрининг в каждой камере для спаривания всех когорт колоний. Как минимум, каждую партию проверяют на наличие вируса цитоплазматического полиэдроза, вируса нуклеополиэдроза и нескольких видов микроспоридий.Каждая партия насекомых включает идентификацию партии для отслеживания отзывов клиентов по записям контроля качества; позволяет определить области для усовершенствования или улучшения продукта.

    Лаборатория разработки методов

    Наша программа исследований по разработке методов поддерживает как IPQL инсектария, так и программу контроля качества.

    Новые колонии насекомых и методы массового производства разрабатываются в изолированном помещении для выращивания. Такая изоляция гарантирует, что качество или здоровье существующих колоний не пострадает по мере разработки новых методов или внедрения новых видов и их проверки на наличие патогенов.

    Методы обнаружения патогенов насекомых разрабатываются или модифицируются в центре контроля качества. Для обеспечения сохранности колоний насекомых этот объект изолирован от IPQL.

    Исследовательские услуги по контракту

    Команда Insect Production Services (IPS) выполняет контрактные исследовательские услуги для клиентов. Персонал IPS имеет большой опыт в разведении видов насекомых. Они также могут опираться на опыт многочисленных исследователей лесных насекомых из исследовательского комплекса Центра лесного хозяйства Великих озер.

    По договору могут быть оказаны следующие услуги:

    • создание новых колоний насекомых
    • разработка специализированных методов выращивания
    • содержание уникальных колоний для удовлетворения индивидуальных потребностей
    • разведение карантинных насекомых-вредителей

    Для получения дополнительной информации об услугах по контракту IPS свяжитесь с Джоном Дедесом.

    Карантин

    Наша программа карантина насекомых поддерживает исследования инвазивных чужеродных видов, проводимые Канадской лесной службой.

    Карантинный комплекс оборудован несколькими помещениями для выращивания с климат-контролем, климатическими камерами и лабораториями, оборудованными для энтомологических исследований.

    Поддержка предоставляется научному персоналу, проводящему эксперименты на карантинном объекте, и персоналу инсектария, разрабатывающему методологию выращивания для создания лабораторных колоний инвазивных чужеродных видов.


    Наши сотрудники

    Команда службы производства насекомых

    Контактное лицо: Общие вопросы (электронная почта) или по телефону (1-705-541-5531)

     

    Заказ

    Ресурсы

    Связанные ресурсы

    Патологический анализ тутового шелкопряда, зараженного двумя микроспоридиями Nosema bombycis CQ1 и Vairimorpha necatrix BM

    Микроспоридии являются облигатными внутриклеточными паразитами (Canning, 1993).На сегодняшний день идентифицировано более 1400 видов микроспоридий, и каждый год обнаруживаются новые виды (Szumowski and Troemel, 2015). Микроспоридии существуют по всему миру, даже в глубоководной биосфере (Sapir et al., 2014). Они могут инфицировать большинство беспозвоночных и позвоночных животных и были признаны возбудителями оппортунистических инфекций у больных СПИДом и реципиентов органов (Keeling, 2009). Nosema bombycis был первым признанным микроспоридием, и он вызвал вспышку болезни пебрина в 1857 г., которая почти уничтожила европейское производство тутового шелкопряда (Nageli, 1857).С тех пор микроспоридии нанесли огромный экономический ущерб медоносному пчеловодству и рыболовству (Wittner, 1999).

    Микроспоридии содержат наборы уникальных экструзионных аппаратов, состоящих из свернутых полярных трубок и стенок спор. Перед заражением полярная трубка присоединяется к якорному диску в апикальной части споры (Vavra and Larsson, 1999). Белки стенки споры, как основной компонент стенки споры, как полагают, вступают в первый непосредственный контакт с клеткой-хозяином и играют решающую роль в процессе заражения (Hayman et al., 2001, Ян и др., 2017). При соответствующих условиях полярная трубка проходит через тонкий передний конец споры, проникает через мембрану клетки-хозяина и позволяет инфекционной спороплазме проникнуть в клетку-хозяин (Bigliardi and Sacchi, 2001).

    Независимо от того, каким образом клетки заражены микроспоридиями, их целью является размножение в различных тканях хозяина, и различные способы передачи часто определяются паразитарными характеристиками. Горизонтальная передача характеризуется выбросом большого количества спор в окружающую среду, где они могут быть проглочены другим хозяином (Dunn and Smith, 2001).Напротив, вертикальная передача характеризуется низкой вирулентностью и ограниченным повреждением тканей (Dunn and Smith, 2001). Поскольку желудочно-кишечный тракт хозяина часто является наиболее восприимчивой областью, оральная инфекция является распространенным микроспоридиозным механизмом (Bauer and PANKRATZ, 1993; Brooks, 1968; Nordin, 1975). В Sparus aurata , зараженном Microsporidium aurata nov. sp., в брюшной полости развиваются многочисленные макроскопические беловатые кисты, которые распространяются во многие органы тела, в том числе и в кишечный эпителий.Они превращаются в опухолевидные массы диаметром до 5 мм, вызывая огромный уровень гипертрофии в инфицированных органах (Morsy et al., 2013). Специализированные отношения между микроспоридиями и хозяином на клеточном уровне были названы ксеномами (Canning and Lom, 1986). Гипертрофированные клетки бычка-стрелы , инфицированные Ichthyosporidium weissii , и клетки массивного увеличения копепод, инфицированные Desmozoon lepeophtherii (Freeman and Sommerville, 2009, Sanders et al., 2012) все рассматриваются как ксеномы. Spraguea lophii , заражающий рыбу микроспоридий, превращающий нервную ткань хозяина в гипертрофированные споровые фабрики, также известные как ксеномы (Campbell et al., 2013). Распространенность морского черта Spraguea может достигать 83%. Однако из-за образования ксеном не известно никаких последствий для физической формы, связанных с инфекцией (Cañás et al., 2010, Freeman et al., 2011). По-видимому, образование ксеном способствует размножению спор.Поскольку естественный процесс гипертрофического роста был частью развития мускулатуры у рыб (Mommsen, 2001), можно было обнаружить, что микроспоридии манипулируют путями клетки-хозяина, производя набухшие клетки (Scanlon et al., 2000). Помимо поражения кишечника и нервной ткани, микроспоридии могут также поражать мышцы, соединительную ткань, жировое тело и эпителий трахеи (Bauer and PANKRATZ, 1993; Brooks, 1968; Nordin, 1975).

    Количество продуцируемых спор и тип инфицированного органа определяют пути передачи микроспоридий (Dunn and Smith, 2001).Трансовариальная передача является наиболее распространенным путем вертикальной передачи микроспоридий беспозвоночных (Dunn et al., 2001). Первичный сайт Fibrillanosema crangonycis n. сп. инфекции в Crangonyx pseudogracilis является женской гонадой, и паразит трансовариально передается яйцам (Johanna et al., 2004). N. bombycis является типичным возбудителем тутового шелкопряда B. mori . Он может передаваться по горизонтали и по вертикали. Вертикальная передача Н.bombycis приводит к огромным экономическим потерям в шелководстве. Микроспоридия Vairimorpha necatrix первоначально была выделена из Pseudaletia unipuncta (Kramer, 1965, Pilley, 1976). Недавно мы выделили изолят V. necatrix , названный V. necatrix BM, из шелкопряда и обнаружили, что он обладает высокой вирулентностью против тутового шелкопряда (Liu et al., 2012, Luo et al., 2014). Средняя кишка, жировое тело и семенной пузырь могут быть сильно инфицированы большим количеством спор V. necatrix BM, в то время как шелковая железа и мальпигиевы канальцы могут быть инфицированы незначительно.Примечательно, что в яичниках не наблюдалось спор, а потомство показало, что споры V. necatrix BM не могут распространяться вертикально, о чем сообщалось в предыдущем исследовании (Luo et al., 2014). Патологию тутового шелкопряда, вызываемую этими двумя микроспоридиями, еще предстоит выяснить. Таким образом, важно сравнить патологию тутового шелкопряда после заражения обоими микроспоридиальными изолятами. Это жизненно важно для понимания трансовариальной передачи и предотвращения инфекций тутового шелкопряда.

    В этом исследовании мы сравнили различные характеристики инфекции, вызванной в B. mori двумя микроспоридиями, N. bombycis CQ1 и V. necatrix BM. V. necatrix BM не может инфицировать яичники тутового шелкопряда, и его вирулентность слабее, чем у N. bombycis CQ1. Однако эмбриональные (BmE-SWU) и овариальные (BmN-SWU) клеточные линии могут быть инфицированы ВМ V. necatrix . Кроме того, наблюдается феномен ксеном, наполненных V.necatrix BM споры, образующиеся вокруг кишечника. Паразитарные ксеномы формировались из инфицированных мышечных клеток, в то время как кишечная структура оставалась интактной при заражении V. necatrix BM. N. bombycis CQ1 и V. necatrix BM могут инфицировать яички. В отличие от V. necatrix BM, N. bombycis CQ1 может инфицировать эпителиальные клетки яичников и соединительную ткань. N. bombycis CQ1 может собирать споры вблизи трахеи, заражая яичники.

    КореяМед Синапс

    1. Каннинг ЕС, Николас Дж.П. Род Pleistophora (Phylum Microspora): переописание типового вида, Pleistophora типичного Gurley, 1893 и ультраструктурная характеристика рода. Дж. Фиш Дис. 1980. 3: 317–338.

    2. Хасимото К., Такинами К. Электронно-микроскопические исследования спор Pleistophora anguillarum , микроспоридий паразита угря. Bull Jpn Soc Sci Fish. 1976. 42:411–419.

    3. Хошина Т. О новом микроспоридии, Pleistophora anguillarum н.зр. из мышцы угря, Anguilla japonica . J Токийский университет рыбы. 1951. 38:35–49.

    4. Кано Т., Фукуи Х. Исследования инфекции Pleistophora у угря, Anguilla japonica . I. Экспериментальная индукция микроспоридиоза и эффективность фумагиллина. Рыбный патол. 1982. 16: 193–200.

    5. Кано Т., Окаучи Т., Фукуи Х. Исследования инфекции Pleistophora у угря Anguilla japonica .II. Предварительный тест на применение фумагиллина. Рыбный патол. 1982. 17: 107–114.

    6. Лом Дж., Дыкова И., Ван Ч., Ло К.Ф., Коу Г.Х. Ультраструктурное обоснование перевода Pleistophora anguillarum Hoshina, 1959 в род Heterosporis Schubert, 1969. Dis Aquat Organ. 2000. 43:225–231.

    7. Lom J, Dykova I, Tonguthai K. Kabatana gen.n., новое название для рода микроспоридий Kabataia Lom, Dykova and Tonguthai.Фолиа Паразитол. 1999. 47:78.

    8. Лом Дж., Нильсен Ф. Микроспоридии рыб: тонкое структурное разнообразие и филогения. Int J Паразитол. 2003. 33:107–127.

    9. Мэтьюз Р.А., Мэтьюз Б.Ф. Клеточные и тканевые реакции палтуса Scophthalmus maximus (L.) на Tetramicra brevifilum gen.n., sp.n (Microspora). Дж. Фиш Дис. 1980. 3: 495–515.

    10. Робертс Р.Дж. Паразиты внутренних органов и мускулатуры. Патология рыб. 2001. 3-е изд. Нью-Йорк: Издательство Harcourt; 285.

    11. Schubert G. Ultracytologische Untersuchungen an der spore der Mikrosporidienart, Heterosporis finki gen. п., сп. н. Z Parasitenkd. 1969. 32: 59–79.

    12. Сух Дж.В., Чун С.К. Эксперимент по заражению Pleistophora угрям, Anguilla japonica и гистопатологическое исследование развития инфекции. Бык корейский Soc Fish Pathol. 1988. 1: 51–57.

    13. Вайс Л.М. Микроспоридии: возникающие патогенные протесты.Acta Trop. 2001. 78:89–102.

    .